Anestesi för kaniner för operationer. Kaniner och anestesi - dekorativa och dvärgkaniner

Melentiev Oleg Nikolaevich, kandidat för veterinärvetenskap, veterinär vid Vetus Center for Veterinary Medicine.

Betydande biologiska egenskaper hos kaniner, som skiljer dem från andra husdjur, måste också beaktas under den postoperativa perioden. För återhämtning efter anestesi placeras kaninen på ett varmt sängkläder eller i en uppvärmd bur med ett varmt golv (Fig. 1, 3), en temperatur på cirka 35 ° C krävs. Så fort kaninens kroppstemperatur stabiliseras och kaninen kan sitta på tassarna bör uppvärmningen sänkas till 26-28°C, eftersom kaniner i detta tillstånd inte kan andas ofta och är mottagliga för hypertermi. Frånvaron av yttre irriterande ämnen och bekväma miljöförhållanden underlättar återhämtningen efter anestesi. Endast en helt vaken kanin ska förvaras i rumstemperatur.


För att hålla är det bäst att välja ett rum där det inte finns några andra djur och deras lukt saknas. Så snart kaninen återhämtar sig tillräckligt för att äta och dricka är det nödvändigt att förse honom med vatten och mat. Omedelbart efter uppvaknandet och hela postoperativa perioden är det att föredra att ge hö, gräs, morötter. Efter att ha extraherat framtänderna är det nödvändigt att ge kaninen mjuk, mosad eller riven mat. Hö av god kvalitet kan också användas som strö för att placera kaninen på bröstet (Figur 2).

Bra operationsteknik, operationshastighet och lämpligt suturmaterial minskar besvären i området för operationssåret, men i de flesta fall krävs postoperativ analgesi. Att bedöma smärta hos kaniner kan vara svårt, eftersom de inte visar många av de tecken på smärta som finns hos andra arter, utan sitter tysta nära baksidan av buren, inte reagerar på sin omgivning. Kaniner är extremt känsliga för smärta, särskilt efter bukkirurgi och borttagning av framtänder. Smärta och stress stimulerar det sympatiska nervsystemet och minskar gastrointestinal motilitet. En minskning av tarmens motilitet är en utlösande faktor för utvecklingen av en kaskad av negativa processer som leder till leverlipidos och död.

Det är möjligt att fastställa förekomsten av smärta genom att observera djuret, men detta kräver nära kommunikation med honom före operationen och kunskap om egenskaperna hos hans beteende. Fysiologiska parametrar som kroppstemperatur, hjärtfrekvens och andning förändras under påverkan av smärta, men för att bestämma dessa parametrar är det nödvändigt att dra ut kaninen ur buren, vilket i sig kan få dem att förändras. Kaniner med smärta närmar sig inte burens främre vägg vid åsynen av mat. De sköter sig inte och kan bli aggressiva mot andra djur som hålls i samma bur. Smärta i bukhålan kan manifesteras genom antagandet av en böjd position av kroppen och slipning av tänder. Ibland beter sig kaniner rastlöst och studsar och snurrar med jämna mellanrum längs botten av buren. Konsekvensen av smärta är en fullständig avvisning av mat.

Analgesi hos laboratoriedjur, inklusive kaniner, har studerats omfattande. Ett smärtpoängsystem har utvecklats för att bestämma effektiviteten av analgetika, även om individuella skillnader kan påverka uppfattningen av smärta, särskilt av måttlig intensitet. Doserna av läkemedel som krävs för att ge analgesi beror på irritationen, så det är nödvändigt att övervaka kaninen och bestämma dess svar på analgesi. Smärta är ett livshotande tillstånd hos kaninen, så alla kaniner med smärta bör förses med smärtlindring.

Analgesi är "frånvaron av smärtkänslighet eller lindring av smärta utan medvetslöshet". Som svar på smärta och andra stressfaktorer frisätts endogena opioider och minskar smärtkänsligheten. Inflammation eller hypoxi på skadestället leder till frisättning av nociceptiva ämnen som kininer, som i sin tur stimulerar bildningen av prostaglandiner.

Opioida analgetika är centralt verkande läkemedel som används vid svår smärta, som har en specifik effekt på det centrala nervsystemet. Farmakologiska effekter är förknippade med en effekt på opioidreceptorerna i det centrala nervsystemet. En mängd olika opioidreceptorer har hittats i hjärnan, ryggmärgen och andra vävnader, inklusive mag-tarmkanalen. Opioider orsakar en viss effekt beroende på typen av receptor, och det finns artskillnader i deras verkan:

– µ- (mu)-receptorer är huvudsakligen ansvariga för supraspinal analgesi, eufori, andningsdepression och orsakar fysiskt beroende hos människor;
- k- (kappa)-receptorer är huvudsakligen ansvariga för spinal analgesi, mios och sedering;
– σ- (sigma) receptorer är ansvariga för dysfori (sur, sur, irriterad, arg stämning med ökad ångest som svar på extern stimulans), hallucinationer, andningsexcitation och olika vasomotoriska effekter.

Andra receptorer, såsom δ-(delta)-receptorer, finns i olika vävnader. Effekter på µ- och k-receptorer är viktigast för smärtlindring.
Andra ingrepp, såsom andningsdepression, sedering eller effekter på gastrointestinal motilitet, kan vara fördelaktiga beroende på i vilken situation dessa läkemedel används.

Hos kaniner används narkotiska analgetika för att ge analgesi och i vissa fall bedövning. De kan också användas efter anestesi för att förlänga den smärtstillande effekten. Å andra sidan orsakar narkotiska analgetika andningsdepression och mental depression, hypotermi och bradykardi hos kaniner.

Buprenorfin är en stark, långverkande smärtstillande, partiell opioidagonist. Hos kaniner används det för långvarig analgesi för att lindra akut eller kronisk smärta i de inre organen i en dos på 0,02-0,05 mg / kg oralt eller intramuskulärt var 6-12:e timme; 0,5 mg/kg rektalt var 12:e timme. Buprenorfin används också för att förhindra de andningsdempande effekterna av fentanyl efter operation när en kombination av fentanyl/fluanison och bensodiazepiner används för anestesi.

Butorfanol är en syntetisk opioidreceptorantagonist. Hos kaniner ger butorfanol analgesi och mild sedering och orsakar inte andningsdepression om inte höga doser används. Appliceras för att lindra postoperativ smärta i en dos på 0,4 mg / kg oralt var 4-6:e timme.

Studier har visat att användning av höga doser butorfanol ger en mindre smärtstillande effekt än lägre doser. Elimineringshalveringstiden för butorfanol hos kaniner vid en dos på 0,5 mg/kg är 1,64 timmar efter intravenös administrering och 3,16 timmar efter subkutan administrering. Butorfanol kan användas för att vända de andningsdepressiva effekterna av µ-agonister som fentanyl, morfin och pefidin.

Tramadol är ett opioidanalgetikum som kommer från cyklohexanol. Icke-selektiv µ-, 5- och k-receptoragonist i CNS. Det är ett racemat av (+) och (-) isomerer (50% vardera), som är involverade i smärtstillande effekter på olika sätt. (+)-isomeren är en ren opioidreceptoragonist, har låg tropism och har inte en uttalad selektivitet för olika receptorsubtyper. Isomer (-), som hämmar det neuronala upptaget av noradrenalin, aktiverar nedåtgående noradrenerga influenser. På grund av detta störs överföringen av smärtimpulser till den gelatinösa substansen i ryggmärgen, vilket orsakar en lugnande effekt. I terapeutiska doser trycker det praktiskt taget inte ned andningen. Det har en hostdämpande effekt. Över 80 % av tramadol utsöndras i kaniner via njurarna. Det fanns inga biverkningar efter oral administrering av tramadol i en dos på 11 mg/kg. Halveringstiden var 145,4 +/- 81,0 minuter; den maximala koncentrationen i blodplasma är 135,3 +/- 89,1 ng/ml. Den rekommenderade dosen för kaniner är 2,0-4,0 mg/kg var 12:e timme.

Fentanyl / fluanison (Fentanyl / fluanison). Fentanyl är en potent opioidagonist som huvudsakligen verkar på µ-receptorn och orsakar analgesi, andningsdepression och, hos människor, eufori. Styrkan hos den smärtstillande verkan är 20-100 gånger högre än morfin. Dess smärtstillande effekt förstärks av fluanison, som också tar bort den dämpande effekten på andningen. Enligt många författare är detta det bästa läkemedlet som används på kaniner för sedering och bedövning, djup analgesi varar 3 timmar efter administrering. Kombinationen fentanyl/fluanison används för premedicinering, sedering och stark analgesi eller, i kombination med midazolam, för anestesi.

I vissa fall kan icke-steroida antiinflammatoriska läkemedel (NSAID), som hämmar syntesen av cyklooxygenas, prostaglandiner och liknande substanser, vara ett alternativ till opioidanalgetika. Cyklooxygenas är ett enzym som främjar bildningen av prostaglandiner från arakidonsyra i cellmembran. Det finns två isomerer av cyklooxygenas: COX-1 och COX-2. Alla NSAID har smärtstillande, febernedsättande och antiinflammatoriska egenskaper. Deras potentiella toxiska effekt är associerad med cyklooxygenasisomerer. COX-1 har ett antal fysiologiska egenskaper, och hämning av COX-1 tros vara ansvarig för de flesta av de toxiska effekterna av NSAID. COX-2 produceras på platser för inflammation genom verkan av inflammatoriska mediatorer.
Karprofen hämmar cyklooxygenas mindre och är därför mindre giftigt, det har en annan verkningsmekanism. Molekylens struktur påverkar också den farmakologiska verkan, särskilt av NSAID som tillhör undergruppen 2-arylpropionsyra (propionsyraderivat: karprofen, ketoprofen och vedaprofen). Vissa djurarter har olika ämnesomsättning. I allmänhet bör intervallet för användning av NSAID hos nyfödda och gamla djur vara längre för att minska toxiciteten.

Undertryckande av normal reglering av prostaglandiner kan leda till otillräcklig perfusion i njurarna hos hypotensiva patienter och till akut njursvikt. Detta händer under anestesi, speciellt om det finns betydande blodförlust, då bör blodtrycket upprätthållas genom att införa den nödvändiga mängden lösningar. Det är lämpligt att ta en 24-timmars paus mellan användningen av NSAID av olika slag.
NSAID kan användas för postoperativ analgesi och behandling av kronisk artros. Effekten av NSAID på prostaglandinsyntesen hos kaniner är signifikant. Prostaglandiner stimulerar frisättningen av mjuk avföring hos kaniner genom att hämma proximal tarmmotilitet och stimulera distal motilitet.

Aspirin (Aspirin) hämmar cyklooxygenas, vilket leder till en minskning av syntesen av prostaglandiner och tromboxanter, minskar trombocytaggregation och inflammation. Aspirin är ett effektivt smärtstillande medel för kaniner, det används som första hjälpen, så många kaninägare har det hemma. Den orala dosen är 100 mg/kg. Den maximala koncentrationen i blodserum hos kaniner uppnås efter 1-2 timmar. Aspirin kan orsaka en minskning av blodplättar och en tendens att blöda hos laboratoriekaniner. Smärtstillande egenskaper är svagare jämfört med vissa andra NSAID som karprofen och flunixin.

Carprofen är en svag cyklooxygenashämmare med lågt COX-1:COX-2-förhållande och minimal toxicitet. Carprofen, på grund av dess tillgänglighet, kan förskrivas efter operation för alla patienter. Även om det kan tas oralt (1,5 mg/kg 2 gånger om dagen), har studier visat att det är bättre att administrera det subkutant eller intravenöst (2-4 mg/kg 1 gång om dagen).
När det administreras subkutant kan det finnas biverkningar förknippade med eventuellt inträngning av läkemedlet i dermis. För att minska antalet komplikationer är det nödvändigt att vara säker på att läkemedlet har kommit in i den subkutana vävnaden, och inte i dermis, och att massera injektionsområdet efter injektionen. Carprofen är speciellt indicerat för akut smärta efter frakturer och skador.

Flunixin är en potent cyklooxygenashämmare som framgångsrikt har använts som ett antiinflammatoriskt medel hos kor och hästar. Tillverkare rekommenderar inte att det används förrän patienten har återhämtat sig helt från allmän anestesi, eftersom detta NSAID kan leda till en minskning av njurblodflödet. Det kan inte heller administreras samtidigt med andra nefrotoxiska läkemedel som gentamicin. Flunixin kan användas som ett smärtstillande och antiinflammatoriskt läkemedel på kaniner i en dos på 1,1 mg/kg 2 gånger om dagen, subkutant.
Av intresse är möjligheten att använda cyklooxygenashämmare för behandling av enterotoxemi. Elmas M. et al. (2008) använde framgångsrikt flunixin 2,2 mg/kg och enrofloxacin 5 mg/kg intravenöst för detta ändamål.

Ketoprofen (Ketoprofen). Ketoprofen har beskrivits hos små däggdjur, inklusive kaniner, som ett alternativ till karprofen och meloxikam. Applicera oralt, två gånger om dagen, i en dos av 1-3 mg/kg.

Meloxikam är ett NSAID med ett lågt COX-1:COX-2-förhållande. Det har en stark antiartritisk effekt och liten potential att orsaka magirritation hos djur jämfört med andra NSAID. Studier av dess toxicitet har visat god tolerabilitet och utmärkt motståndskraft mot det i kaninvävnader.

Frisättningen av magen från detta läkemedel och tarmtransport påverkas inte av terapeutiska doser av meloxikam, med undantag för en kortvarig effekt på magsyran. Doser som är signifikant högre än de som rekommenderas för antiinflammatorisk verkan påverkade inte utsöndringen av vatten, elektrolyter och kreatinin under hela observationsperioden. Efter en enstaka oral administrering av meloxikam i dosen 0,3 och 1,5 mg/kg nåddes den maximala plasmakoncentrationen av läkemedlet efter 6-8 timmar och uppgick till 0,14 respektive 3,0 μg/ml, vilket minskade till en odetekterbar nivå i 24 timmar. Med en fem-dagars användning av läkemedlet observerades inte kumulering, för att uppnå den erforderliga terapeutiska koncentrationen vid användning en gång om dagen krävs doser som överstiger 0,3 mg / kg. Kaniner kan ges med blomhonung för långvarig analgesi vid smärtsamma tillstånd som artrit eller spondylos i en dos på 0,1-0,2 mg/kg var 12:e timme.

Snickare J.W. et al. (2009), som studerade farmakokinetiken för meloxikam hos kaniner, fann att oral administrering av läkemedlet i en dos på 0,2-0,3 mg/kg en gång om dagen var tillräcklig och fann inga biverkningar efter att ha använt det i 10 dagar. Den maximala koncentrationen av läkemedlet i plasma den första dagen var 0,17 mcg/kg, den 10:e dagen - 0,24 mcg/kg. Dessutom har Salhab A. S. et al. (2001) fann att meloxikam i en dos på 20 mg/kg hämmade intraperitonealt ägglossning hos kaniner när det administrerades 2 och 5 timmar efter samlag.

NSAID väljs baserat på deras smärtstillande och antiinflammatoriska aktivitet. Läkemedel som flunixin och karprofen ger analgetiska effekter jämförbara med opioidanalgetika. Leach M.C. et al. (2009) studerade effekten av smärta och stress på kaninernas beteende efter ovariehysterektomi och möjligheten att använda meloxikam under den postoperativa perioden. Det visade sig att för tillräcklig analgesi vid skada på mjukvävnader behöver kaninen stora doser av läkemedlet (initialdos - 1 mg / kg, efterföljande - 0,5 mg / kg / dag) eller en kombination av meloxikam med opioidanalgetika.
Cooper C.S. et al. (2009) jämförde effekterna på aptiten hos kaniner av meloxikam och buprenorfin under 7 dagar efter operationen, avförings- och urinräkningar, kroppsvikt och analgesinivåer och kom fram till att meloxikam är ett bra alternativ till buprenorfin och, när det används, risken för anorexi och gastrointestinal stas är minimal.

För att säkerställa att anestesin är tillräcklig kan opioidanalgetika och NSAID användas samtidigt med minimal risk för biverkningar.
När en kanin släpps från sjukhuset instrueras ägaren att noggrant övervaka husdjurets beteende, matintag och fasta avföring. Kaninen ska tas in för omundersökning om den inte ätit på mer än 24 timmar. Om ägaren till kaninen är osäker på om kaninen äter eller har nedsatt aptit bör djuret läggas in på sjukhus för vidare observation. En kanin som inte börjar äta efter operationen behöver behandling för att förhindra eller korrigera gastrointestinala stas och en omvärdering av postoperativa recept.

Litteratur

Lista

  1. Plumb, Donald K. Farmakologiska preparat i veterinärmedicin // M., 2002. - 856 sid.
  2. Aeschbacher, G. Rabbit anesthesia // Kompendium om fortbildning, 1995, 17, 1003-1011.
  3. Carpenter J. W., Pollock C. G., Koch D. E., Hunter R. P. Farmakokinetik för enkel- och multipeldoser av meloxikam efter oral administrering till kanin (Oryctolagus cuniculus) // J Zoo Wildl Med. dec 2009; 40(4): 601-6.
  4. Cooper C. S., Metcalf-Pate K. A., Barat C. E., Cook J. A., Scorpio D. G. Jämförelse av biverkningar mellan buprenorfin och meloxikam som används postoperativt i holländska bältade kaniner (Oryctolagus cuniculus) // J Am Assoc Lab Anim Sci. maj 2009; 48(3): 279-85.
  5. Elmas M., Yazar E., Uney K., Er Karabacak A., Traş B. Farmakokinetik för enrofloxacin och flunixin meglumin och interaktioner mellan båda läkemedlen efter intravenös samtidig administrering i friska och endotoxemiska kaniner // Vet J. 2008 Sep; 177(3): 418-24. Epub 2007 17 juli.
  6. Fujibayashi K., Sakamoto K., Watanabe M., Iizuka Y. Farmakologiska egenskaper hos R-84760, en ny kappa-opioidreceptoragonist // Eur J Pharmacol. 1994 11 aug; 261(1-2): 133-40.
  7. Flecknell P. A. The relief of pain in laboratory animals // Lab Animal., 1984; 18, 147-160.
  8. Flecknell P. A. Analgesia in small däggdjur // Sem Avian Exotic Pet Med., 1998; 7, 41-47.
  9. Flecknell P. A., Liles J. H., Wootton R. Reversering av fentanyl/fluanison-neuroleptanalgesi hos kanin med hjälp av blandade agonist/antagonistopioider // Lab Anim. 1989 apr; 23(2): 147-55.
  10. Green C. J. Neuroleptanalgetiska läkemedelskombinationer vid anestesibehandling av små laboratoriedjur // Lab Animal., 1975; 9, 161-178.
  11. Hawkins M. G., Taylor I. T., Craigmill A. L., Tell L. A. Enantioselektiv farmakokinetik för racemisk karprofen i Nya Zeelands vita kaniner // J Vet Pharmacol Ther. 2008 okt; 31(5): 423-30.
  12. Hayashida M., Fukunaga A., Fukuda K., Yamazaki S. Y., Arita H., Hanaoka K. En kaninmodell för utvärdering av kirurgisk anestesi och analgesi: karakterisering och validering med isoflurananestesi och fentanylanalgesi // J Anesth. 2004; 18(4): 282-91.
  13. Hubbell J. A., Muir W. W. Utvärdering av en undersökning av diplomater från American College of Laboratory Animal Medicine om användning av smärtstillande medel hos djur som används i biomedicinsk forskning // J Am Vet Med Assoc. 1 sep 1996; 209(5): 918-21.
  14. Jenkins W. L. Farmakologiska aspekter av analgetiska läkemedel hos djur: en översikt // J Am Vet Med Assoc., 1987; 191, 1231-1240.
  15. Karachalios T., Boursinos L., Poultsides L., Khaldi L., Malizos K. N. Effekterna av korttidsadministrering av låga terapeutiska doser av anti-COX-2-medel på läkning av fraktur // En experimentell studie på kaniner. J Benledskirurg Br. 2007 sep; 89(9): 1253-60.
  16. Leach M. C., Allweiler S., Richardson C., Roughan J. V., Narbe R., Flecknell P. A. Beteendeeffekter av ovariohysterektomi och oral administrering av meloxikam i laboratoriehystade kaniner // Res Vet Sci. 2009 okt; 87(2): 336-47. Epub 2009 19 mars.
  17. Lintz W., Erlaçin S., Frankus E., Uragg H. Biotransformation av tramadol hos människor och djur Arzneimittelforschung. 1981; 31(11): 1932-43.
  18. Miyazaki Y., Horii Y., Ikenaga N., Shimoda M., Kokue E. Möjlig aktiv transportmekanism i farmakokinetik av flunixin-meglumin i kaniner // J Vet Med Sci. 2001 aug; 63(8): 885-8.
  19. Ohya M., Taguchi H., Mima M., Koumoto K., Fukae T., Uchida M. Effekter av morfin, buprenorfin och butorfanol på luftvägsdynamiken hos kaninen // Masui. 1993 apr; 42(4): 498-503.
  20. Osterloh G., Friderichs E., Felgenhauer F., Günzler W. A., Henmi Z., Kitano T., Nakamura M., Hayashi H., Ishii I. Allmänna farmakologiska studier på tramadol, ett potent analgetikum Arzneimittelforschung. 1978; 28(la): 135-51.
  21. Portnoy L.G., Hustead D.R. Pharmacokinetics of butorphanoltartrat in rabbits // Am J Vet Res., 1992; 53, 541.
  22. Richardson V. C. G. Rabbits hälsa, hushållning och sjukdomar. Blackwell Science Ltd, 2000. - 178 rubel.
  23. Salhab A. S., Gharaibeh M. N., Shomaf M. S., Amro B. I. Meloxicam hämmar kanin ägglossning // Preventivmedel. 2001 juni; 63(6): 329-33.
  24. Smådjur klinisk farmakologi / Jill Maddison et al. - Elsevier Limited, 2008. - 589 sid.
  25. Stephen J. Birchard, Robert G. Sherding – Saunders Manual of Small Animal Practice, tredje upplagan, 2005. – 2008 sid.
  26. Souza M. J., Greenacre C. B., Cox S. K. Farmakokinetik för oralt administrerad tramadol i tamkaniner (Oryctolagus cuniculus). Am J Vet Res. 2008 aug; 69(8): 979-82
  27. Turner P.V., Chen H.C., Taylor W.M. Farmakokinetik för meloxikam i kaniner efter enkel och upprepad oral dosering // Comp Med. februari 2006; 56(1): 63-7.
  28. Turner P. V., Kerr C. L., Healy A. J., Taylor W. M. Effekt av meloxikam och butorfanol på minsta alveolära koncentration av isofluran i kaniner // Am J Vet Res. maj 2006; 67(5): 770-4.
  29. Wixson S.K. Anestesi och analgesi. I The Biology of the Laboratory Rabbit, Academic Press, 2nd edn. 1994 (P.J. Manning och D.H. Ringler, red.). s. 87–109.

-- [ Sida 2 ] --

I blodet bestämdes antalet erytrocyter, deras hemoglobininnehåll, ESR, färgindex och antalet leukocyter, och leukogrammet studerades enligt de metoder som allmänt accepteras inom hematologi.

Blod för att erhålla serum togs från halsvenen i torra provrör före administrering av läkemedel, 24 timmar, 1, 3, 7 och 14 dagar efter experimentet.

I blodserum bestämdes följande: mängden glukos, totalt protein, aktiviteten av AST och ALT, koncentrationen av totalt bilirubin, urea, kreatinin med användning av en BioChem SA halvautomatisk biokemisk analysator.

Elektrokardiografiska studier utfördes med användning av en EK 14 T elektrokardiograf, registrering utfördes i den andra elektroden; bedömningen utfördes med en allmänt accepterad metod inom kardiologin.

Orkidektomi på kaniner utfördes på ett slutet sätt.

Ultraljudsundersökning av bukorganen hos kaniner utfördes med en bärbar veterinär ultraljudsskanner PU 2200 Vet före administrering av läkemedel, 10 minuter efter administrering av en 2% lösning av xylazinhydroklorid, Zoletil, såväl som deras kombination efter 10, 30, 60, 90, 120, 150 och 180 minuter enligt den av oss utvecklade metoden.

Den morfologiska bilden av bukorganen bedömdes vid obduktion av kaniner vid olika perioder av studien: utan användning av Rometar och Zoletil (kontrollgrupp), 30 minuter efter administreringen av dessa läkemedel, 1 dag efter operationen och 7 dagar efter generell anestesi.

För histologiska studier fixerades organbitar i 10 % neutralt formalin, histologiska snitt preparerades på en slädemikrotom 5–7 µm tjock, färgad med hematoxylin och eosin.

Statistisk bearbetning av det digitala materialet av resultaten av studien utfördes med metoden för variationsstatistik med hjälp av programvaran Microsoft Excel XP, där M, m, tillförlitlighetskoefficienten P härleddes, med hänsyn till studentens kriterium.

Graden av tillförlitlighet för indikatorer i förhållande till de före upplevelsen markerade med * var mindre än 0,05.

3. FORSKNINGSRESULTAT

3.1. Val av läkemedel och bedömning av graden av allmänning

bedövning hos kaniner

De genomförda studierna gjorde det möjligt att bestämma den mest optimala varianten av generell anestesi för kaniner. I samtliga fall visade sig premedicinering med en 2% lösning av xylazinhydroklorid vara motiverad.

Introduktionen av rometar åtföljdes av förändringar som är karakteristiska för drogerna i denna grupp. 5-10 minuter efter administreringen av läkemedlet sänkte djuren sina huvuden, sedering och en minskning av smärtkänslighet observerades, men kaniner visade ganska aktivt motstånd mot vissa manipulationer i samband med fixering i sidoläge.

Intravenös jetadministration av en 1% vattenhaltig propofol-emulsion orsakade en uttalad avslappning av extremiteternas muskler, men smärtkänsligheten kvarstod, vilket uteslöt möjligheten till kirurgiska ingrepp.

Inandning med eter orsakade frånvaron av reflexer och smärtkänslighet inom 10 minuter, tonen i musklerna i käkarna och ögonlocken - 15 minuter. Efter 30 minuter försökte kaninerna resa sig och efter 40 minuter kunde de självständigt ändra kroppens position i rymden.



Användningen av Zoletil-50 som mononarkos gav omedelbar muskelavslappning och frånvaro av smärtkänslighet inom 5 minuter. Efter 30 minuter återställdes kaninernas motoriska aktivitet och efter 1 timme kunde de röra sig självständigt.

Mot bakgrund av sedering med Rometar gjorde introduktionen av Zoletil-50 både intramuskulärt och intravenöst det möjligt att nå det kirurgiska stadiet av anestesi. 25-30 minuter efter intramuskulär och 30-35 minuter efter intravenös administrering återställdes smärtkänsligheten, efter 45-60 minuter försökte kaninerna resa sig och kunde röra sig självständigt efter 90 minuter.

3.2. Inverkan av läkemedel för smärtlindring och deras kombinationer på klinisk status, morfologiska, biokemiska blodparametrar och hjärtaktivitet hos kaniner

3.2.1. Effekten av rometar och eter på kroppen av kaniner

Premedicinering med rometar orsakade en lätt ökning av kroppstemperaturen hos kaniner i den första undergruppen av denna grupp, som ersattes av en minskning av värdet på denna indikator efter användning av eter och kvarstod i tre timmar.

10 minuter efter administreringen av rometar skedde en minskning av pulsen och andningsfrekvensen, som, 10 minuter efter användningen av eter för anestesi, ersattes av en ökning, men redan 30 minuter efter var det en tendens att minska, och en dag senare närmade sig värdena för hjärtfrekvensen och andningsrörelserna originalet.

I den morfologiska sammansättningen av blodet hos kaniner i denna undergrupp, inom en timme, fanns det en tendens att minska antalet erytrocyter och innehållet av hemoglobin i dem. Efter sedering med rometar ökade innehållet av leukocyter något, vilket ersattes av en minskning av deras antal efter användning av eter. Tre timmar efter anestesi registrerades en kraftig ökning av antalet leukocyter, och först på den sjunde dagen återhämtade sig denna indikator till den initiala nivån (fig. 1, 2).

Förändringar i leukogram gällde främst antalet segmenterade, stickande former av neutrofiler och lymfocyter.

10 minuter efter intramuskulär administrering av rometar uppträdde en tendens att öka andelen segmenterade neutrofiler, som kvarstod i tre timmar även efter inandning av eter. Förändringar i antalet lymfocyter liknade förändringar i segmenterade neutrofiler, men med motsatt tecken (Fig. 3, 4).

I den biokemiska sammansättningen av blodserum fanns en minskning av glukos-, ALT- och AST-aktivitet, en ökning av koncentrationen av totalt bilirubin, urea, kreatinin och totalt protein. Nästan alla indikatorer nådde den initiala nivån efter 14 dagar (tabell 2).

Efter introduktionen av rometar skedde en minskning av hjärtfrekvensen, förlängning av både systoliska och diastoliska perioder och en signifikant minskning av amplituden för R-vågen. Inandning av etern ledde till en minskning av varaktigheten av QT- och RR-intervallen , deformation av P-vågen som inte föregick varje QRS-komplex, en ökning av T-vågens amplitud, som blev negativ, en minskning av R-vågens amplitud.

Efter 24 timmar skilde sig elektrokardiogramparametrarna praktiskt taget inte från de första.

3.2.2. Effekten av zoletil på kroppen hos kaniner

När man studerar indikatorerna som kännetecknar den kliniska statusen för experimentkaninerna i den andra undergruppen av den första gruppen, en minskning av kroppstemperaturen, en minskning av hjärtfrekvens och andningsrörelser, vilket kan spåras inom 3 timmar efter administrering av läkemedlet och nå den initiala nivån efter 1 dag, har fastställts.

Efter intravenös administrering av Zoletil observerades en minskning av antalet erytrocyter och deras hemoglobinhalt. En dag senare skilde sig dessa indikatorer praktiskt taget inte från de uppgifter som erhölls före administreringen av läkemedlet. Dessa förändringar åtföljdes av en ökning av antalet leukocyter, som kvarstod i tre dagar (Fig. 1, 2).

I leukogram noterades en ökning av andelen stickneutrofiler redan en timme efter införandet av djur i anestesi och förblev på denna nivå i tre dagar. En timme efter påbörjad anestesi ökade antalet segmenterade neutrofiler, vilket, liksom hos djuren i den föregående undergruppen, ledde till en minskning av antalet lymfocyter och omvänt samtidigt med studien (fig. 3) 4).

Inom tre dagar efter intravenös administrering av Zoletil observerades en minskning av glukosnivåerna och en ökning av mängden totalt protein i blodserumet.

10 minuter efter administreringen av Zoletil skedde en lätt minskning av hjärtfrekvensen, en minskning av S-vågens amplitud i vissa cykler. En timme senare, i separata cykler, noterades extrasystole, en ökning av amplituden för P- och R-vågorna och T-vågen blev negativ. Varaktigheten av R-R- och Q-T-intervallen ökade.

En dag senare närmade sig elektrokardiogramvärdena de första.

3.2.3. Inflytande av rometar och zoletil på kroppen hos kaniner

Efter införandet av Zoletil mot bakgrund av sedering med rometar hos kaniner började en minskning av kroppstemperaturen, och efter tre timmar nådde den en miniminivå (35,2±0,36C).

Den avmattning av pulsen som observerades efter administrering av rometar ersattes av en kortvarig normalisering efter administrering av zoletil, varefter bradykardi återigen observerades. De beskrivna förändringarna åtföljdes av en minskning av andningen. En dag senare skilde sig värdena för dessa indikatorer praktiskt taget inte från de pre-experimentella.

En trend mot en minskning av antalet erytrocyter och deras hemoglobinhalt observerades inom en timme efter administrering av zoletil och ersattes av en snabb återhämtning av antalet erytrocyter, som efter tre timmar inte skiljde sig signifikant från de data som erhölls före administrering av rometar och zoletil (Fig. 1).

På bilden av vitt blod liknade förändringarna de hos kaniner i den första undergruppen av denna grupp, men med en mindre svårighetsgrad.

Antalet leukocyter ökade 10 minuter efter premedicinering och efter administrering av Zoletil-50 minskade det inom 30 minuter. Tre timmar senare noterades en ökning av innehållet av leukocyter, som ersattes av en minskning och nådde ett minimivärde på den tredje dagen, sedan fanns det en tendens att öka det (fig. 2).

Förändringar i leukogram liknade de hos djuren i den andra undergruppen, men mindre uttalade. 10 minuter efter appliceringen av Zoletil-50 uppträdde unga neutrofiler i blodet, som vid andra tidpunkter av studien inte hittades i det perifera blodet hos kaniner i denna undergrupp. Andelen stickande former av neutrofiler minskade 10 minuter efter premedicinering. 10 minuter efter att ha nått det kirurgiska stadiet av anestesi noterades en ökning av andelen stickneutrofiler, som varade i 24 timmar och först på den sjunde dagen närmade sig deras antal den första.

Antalet segmenterade neutrofiler 10 minuter efter administrering

Figur 1 - Förändringar i antalet erytrocyter i Figur 2 - Förändringar i antalet leukocyter i

kaniner i den andra gruppen, 1012/l kaniner i den andra gruppen, 109/l


Figur 3 - Procentuella förändringar Figur 4 - Procentuella förändringar

segmenterade neutrofiler i kaninlymfocyter i kaniner i den andra gruppen

andra gruppen

Tabell 2 - Förändringar i biokemiska parametrar för blodserum från kaniner

undergruppsnummer Forskningsdatum Glukos, mmol/l Urea, mmol/l Bilirubin, µmol/l Al AT, E/l Ac AT, E/l Totalt protein, g/l Kreatinin, µmol/l
1 Före administrering av läkemedel 6,15±0,86 4,95±1,09 2,06±0,61 55,6±2,88 16,2±3,96 64,31±3,29 122,8±8,35
1 dag 3,69±0,51* 9,41±1,88* 2,84±1,00 41,6±7,02* 13,2±2,77 73,02±5,21* 204,6±13,72*
3 nätter 3,07±0,86* 8,08±1,55* 3,87±0,72* 49,0±5,43 16,2±6,22 72,98±5,24* 218,8±15,04*
7 nätter 3,62±0,63* 6,37±1,42 7,23±1,84* 51,0±5,52 16,8±5,59 70,14±2,64* 169,6±8,88*
14 dagar 6,18±0,70 4,98±0,88 2,13±0,55 55,2±2,77 16,2±3,63 64,28±3,42 123,6±5,94
2 Före administrering av läkemedel 6,47±0,67 4,73±0,54 2,22±0,77 49,6±3,05 15,2±3,96 63,5±6,34 117,4±10,95
1 dag 3,13±0,47* 2,82±0,43* 3,99±0,63* 64,6±7,86* 11,8±3,7 73,3±9,31 140,86±9,65*
3 nätter 1,99±0,10* 4,95±0,78 0,83±0,44* 49,8±6,87 60,8±16,02* 81,03±8,8* 65,8±4,87*
7 nätter 3,18±0,31* 5,31±0,59 2,5±0,84 50,4±4,34 46,4±10,88* 77,04±8,46* 104,00±11,60
14 dagar 6,44±0,59 4,76±0,47 2,21±0,71 50,00±2,35 15,60±3,36 63,3±4,9 117,8±9,65
3 Före administrering av läkemedel 5,44±0,66 7,08±2,45 2,71±1,29 57,6±11,74 14,2±2,28 59,54±2,18 110,0±23,8
1 dag 3,31±0,32* 4,88±0,77 3,35±1,51 25,00±12,88* 35,6±6,19* 71,89±6,00* 171,6±25,60*
3 nätter 3,44±1,22* 5,97±2,52 2,68±1,17 44,00±16,72 17,8±2,59 68,45±5,01* 155,00±35,04
7 nätter 4,75±1,17 8,80±1,11 4,61±2,39 50,6±15,22 14,6±3,36 76,51±2,11* 141,2±20,71
14 dagar 5,46±0,74 7,14±2,39 2,69±1,18 57,8±11,39 14,2±2,39 59,74±3,15 116,8±19,92

Kastrering är en lösning på kaninernas fertilitetsproblem. Vem känner inte till det vanliga uttrycket "ras som kaniner"! Detta djur har praktiskt taget blivit en symbol för fertilitet, vilket naturligtvis inte bör glömmas av ägarna till dekorativa örondjur, som har en dekorativ version av husdjur.

För att undvika många negativa händelser, experter rekommenderar snabb sterilisering eller kastrering av dem. Vad hotar detta eller, tvärtom, inte hotar kaninen och bör det göras?

Denna operation kan utsättas för både honan och hanen. I det första fallet binds kaninerna upp äggledarna, vilket på konstgjord väg skapar deras obstruktion, och för de "manliga" kaninerna - sädeskanalerna, eller ett fragment av dem, tas bort.

Det vill säga i stort sett grov störning i kaninens kropp förekommer inte: könsorganen tas inte bort, de fungerar, som de säger, i normalt läge, fortsätter att producera hormoner. Den sexuella instinkten hos individer störs inte, minskar inte, de kan para sig. Men målet med själva proceduren - att förhindra att kaniner förökar sig okontrollerat - har uppnåtts.

Efter sterilisering kan husdjuret gå ner i vikt eller bli aggressivt. Kan sterilisering på något sätt påverka kaninens kropp? På grund av det naturliga behovet av fortplantning, och även med ett normalt fungerande reproduktionssystem, steriliserade kaniner är föremål för stora hormonella störningar.

Djurets kropp utsätts för stress, vilket kan leda till allvarliga hälsoproblem, särskilt problem med genitourinary system. Ett stackars husdjur kan så att säga gå ner i vikt utan uppenbar anledning, vägra äta, inslag av aggression dyker upp i hans beteende även i förhållande till ägarna.

Kastrering: för- och nackdelar

Kastrering är en operation för att helt avlägsna reproduktionsorganen, de där. som ett resultat av henne förlorar kaninerna sina äggstockar (partiell kastration) eller dem tillsammans med livmodern (komplett), och båda testiklarna tas bort från hanarna.

Om sterilisering endast eliminerar funktionen av reproduktion med alla resulterande hormonella konsekvenser, då kastrering av hormonella problem i kaninkroppen skapar inte.

Minus

Det måste erkännas att ett sådant kirurgiskt ingrepp, med många fördelar, som vi kommer att diskutera nedan, också har några obehagliga ögonblick:

  • som alla operationer är det trauma och stress(både för husdjuret och för ägaren);
  • kontantutgifter;
  • extra vård.

fördelar

Trots vissa "mot" experter, svarar på frågan "är det nödvändigt att kastrera dekorativa kaniner?", hävdar att för män med öron av båda könen är kastrering det bästa alternativet. För - många argument:

Vid vilken ålder gör

Det händer ofta att kastrering bör utföras på en redan medelålders fluffig av hälsoskäl. Veterinärer anser dock att det är bäst att göra detta när kaninen fortfarande är ung, frisk och pigg.

Sterilisering bör utföras när husdjuret är sex månader gammalt. Kaninen blir könsmognad vid cirka 4 månaders ålder, och i princip är operationen redan möjlig. Men 6 månaders ålder anses vara säkrare.

En indikator för män är testiklarnas nedgång i pungen. Detta händer också i ungefär samma ålder - 3,5-4 månader.

Det är inte värt att göra en sådan operation innan: inte bara är det tekniskt svårare, det är också oförutsägbart för kaninens hälsa.

"Doktor Aibolit" kommer inte heller att åta sig kastrering av en gammal kanin. Statistiskt sett, Sannolikheten för ett misslyckat resultat av operationen ökar med åldern. Och även en patient som har passerat tvåårsgränsen bör redan genomgå en grundlig undersökning med tester.

Om kaninen är mer än 4 år gammal är sannolikheten för hans död mycket högre än för hans 6-9 månader gamla motsvarighet.

När är det fortfarande inte möjligt?

Om ett husdjur är överviktigt kommer det inte att kastreras tills det återgår till det normala.

De kommer att göra detsamma i närvaro av vissa sjukdomar - först måste den fluffiga patienten botas.

Hur är operationen

Anestesi. Driftsprocedurerna för män och kvinnor är olika. Hos kaniner avlägsnas testiklarna helt. Detta kan göras genom att göra ett eller två snitt.

I den första varianten avlägsnas båda testiklarna genom ett snitt, i den andra görs snitt över var och en av dem, och organen avlägsnas separat. Allt detta görs under lokalbedövning.

Antiseptiskt behandlade snitt kan förbli öppna. Alternativet "stängt" innebär suturering eller applicering av kirurgiskt lim.

Operationen hos honan är mer komplicerad. Alla reproduktionsorgan avlägsnas från kaninen, och en sådan intervention kräver användning av anestesi. Efter avlägsnande sys också blodkärlen som matade dessa organ, och suturer placeras för att stänga snittet.

Om du är orolig för kvaliteten och effekten av anestesi på det opererade husdjuret måste du "övervaka" veterinärkliniker i förväg, studera recensionerna från ägarna som har stött på ett sådant problem och välja en specialist som redan har lång erfarenhet av behandling, inklusive kirurgiska, prydnadskaniner.

Operation: före och efter

Innan det avgörande ögonblicket bör du klargöra på kliniken:

  • vad kommer ditt husdjur att utsättas för - sterilisering eller kastrering;
  • vilka tester som behöver göras ytterligare;
  • vilka mediciner eller enheter som kan behövas under den postoperativa perioden;
  • hur man förbereder en kanin för operation.

Du bör inte ha ditt husdjur under en halv dag på en "svältdiet". För ett ständigt tuggande djur är detta stressande. Du behöver bara minska den vanliga dosen.

... Men nu har alla nödvändiga manipulationer för att förhindra kaninens "befolkningsexplosion" avslutats, och nu kommer den avgörande perioden - postoperativ vård. Hur man utför det måste du säkert ta reda på även på en veterinärklinik.

Var noga med att fråga läkaren vilket beteende som kan förväntas från den opererade kaninen, för att inte vara rädd för "avvikelser"; hur snittstället och postoperativ sutur ska se ut; hur man bearbetar dem.

Man måste vara beredd på vad under de första postoperativa timmarna kommer kaninen att vackla, och han kan bete sig mycket ovanligt.

Den måste placeras på en ren bostadsyta och ge komfort, lugn och dryck. Brickan ska också vara ren och fylld med färskt fyllmedel (som tillval - med papperslappar - ett helt neutralt material).

Mat kan erbjudas efter några timmar, men får inte ätas för mycket åtminstone under de tre första dagarna.

Tala med din läkare om hur du tar hand om ditt husdjur efter operationen. Titta på ditt husdjurs aptit samt urinering och avföring. Om du plötsligt märker att han inte äter, att han inte har kissat på länge, eller att han inte har någon avföring, eller omvänt diarré uppstår, är detta en anledning att kontakta en specialist.

Den opererade platsen bör undersökas regelbundet. Sömmen måste vara torr och ren. En kanin har ofta en önskan att gnaga på sömmarna - det är nödvändigt att på något sätt säkra dem, trots husdjurets aktiva avvisande av alla typer av skyddande bandage och kragar.

Om sömmen "känns" normal behöver den inte behandlas med något. Men en bedövning för en kanin, och speciellt en kanin, skulle inte skada alls. Smärta kan bromsa ett djurs postoperativa återhämtning, vilket stör både näring och personlig hygien.

Även om kaninen kommer att kräva aktiv rörelse runt rummet efter ett par dagar, tillåt det inte för tillfället: snittplatsen kan vara skadad och skadad.

Oroa dig inte om du märker svullnad av pungen. Om detta observeras i högst två veckor, anses det vara normen.

Efter kastrering kan kaniner inte avgöras med kaniner barnafödande ålder. Faktum är att hos den opererade hanen behåller spermierna som finns kvar i sädesledaren sina egenskaper under lång tid, och testosteronnivån sjunker inte omedelbart till "noll", därför kommer kaninen att försöka para sig i ytterligare 3-4 veckor, och kaninen kan bli dräktig.

Emissionspris

Sterilisering eller kastrering är naturligtvis en betald procedur. Hur mycket det kostar varierar i olika städer och även på olika kliniker. På privata veterinärinrättningar är priset vanligtvis högre än på offentliga.

Att kastrera en hane är billigare än en hona. Detta kan också bero på öronens ras. Ofta är det lika med eller överstiger priset för "patienten". Kostnaden för själva kirurgiska ingreppet börjar från 2000 rubel. Vi måste lägga till priset på anestesi, förbrukningsvaror, mediciner, droppare, såväl som ytterligare studier - ultraljud, tester, eko och elektrokardiogram. Det är möjligt att du kommer att behöva lämna ditt husdjur på kliniken en tid.

Bör inte diskonteras och sådana utgifter som transport fram och tillbaka, en preliminär konsultation med en veterinär och hans slutliga undersökning, samt inköp av skyddsanordningar (bandage / krage).

Om du är en lycklig ägare till ett par dekorativa kaniner, för att undvika problemet med överbefolkning av kaniner, måste du verkligen bestämma dig själv i förväg vad du ska göra med dina husdjurs sexuella intressen och vilket av sätten som kommer att verka mer humant för dig - sterilisering eller kastrering, efter att ha studerat råd och feedback från experter och kollegor efter hobby.

I kontakt med

Varför kastreras eller kastreras kaniner:
– Man tror att kastrerade och kastrerade kaniner är friskare och därför lever längre. Genom att sterilisera kaniner eliminerar du faktiskt risken för att få cancer i honornas fortplantningsorgan. En kastrerad hane kommer däremot att leva mycket längre och få färre skador på grund av att han slutar försöka slåss med andra husdjur (andra kaniner, katter etc.).
Kastrerade och kastrerade kaniner är mer vänliga och sällskapliga. De är lugnare, mer tillgivna, förutsägbara. Dessutom gör kaniner mycket färre haverier i huset (de gnager möbler mindre och gräver hål i mattor), aggressiviteten minskar (försök att bita, repa, morra åt ägarna, bryter ut och springer iväg). Efter operationen de
-Sluta slå. Efter kastrering och sterilisering slutar kaniner, både hanar och honor, att markera sitt revir och är mycket lättare att lära sig gå på toaletten på ett ställe än tidigare.
Kastrering och sterilisering av kaninerär typ ditt bidrag till djurens preventivmedel. Mer än 15 000 underbara husdjur som katter, kaniner, hundar dör varje år i vårt land (i detta sammanhang USA) av kyla och hunger, och lämnas av sina ägare åt sitt öde. Många djur dör av att de släpps ut i skogsparker eller helt enkelt ut på gatan, där de berövas mat och dör av sjukdomar, och är också ett lätt byte för andra djur och eller dör springande över vägen. Det är inte alls ett faktum att kaninerna som du lämnar över till djuraffären kommer att få ett bättre liv. Eftersom de kommer att säljas som en vara till den första köparen som stöter på och ingen kommer att kontrollera för vilket syfte djuren är köpta. Många kaniner kommer att matas till ormar eller köpas som en godbit till ett barn som snart kommer att bli uttråkad.
Kastrerade och kastrerade mycket mer självbelåtna och lekfullt relatera till nya vänner. Kaniner är sociala djur och hon tycker om att bli vän med andra kaniner. Men tills de är steriliserade kan de tyvärr inte behandla en annan kanin som en vän, på grund av sexuella trakasserier (av motsatt kön) eller aggression mot kaniner av samma kön, som orsakas av hormoner.
Spaying och spaying av kaniner är säkert(förutsatt att du kontaktat en erfaren veterinär). The Domestic Rabbit Association www.rabbit.org har sett denna typ av operation mer än tusen gånger. Dödsfall står för cirka 0,1 % av sådana operationer, huvudorsaken är anestesi. En erfaren kaninveterinär kommer att utföra denna operation med liten eller ingen risk för ditt husdjurs hälsa. Låt inte en låg eller oerfaren veterinär utföra denna typ av operation på ditt husdjur.
Är operationen verkligen säker för kaniner?
Denna operation är lika säker för kaniner som för andra djur. Tyvärr vet de flesta veterinärer inte hur man utför säkra operationer på kaniner. Låt inte en oerfaren veterinär eller en veterinär som inte har arbetat med kaniner operera ditt husdjur. Det är också nödvändigt att ta hand om kaninen ordentligt före och efter operationen.
Vid vilken ålder kan en kanin opereras?
Honor kan opereras efter puberteten vid 4 månader, men de flesta veterinärer föredrar att vänta till sex månaders ålder, eftersom yngre kaniner kan uppleva mindre bladlösa operationer. Hanar kastreras från och med 3,5 månaders ålder så snart deras äggstockar sjunker, men de flesta veterinärer rekommenderar att man väntar upp till fem månader.
Vid vilken ålder är det för sent för denna operation?
Veterinärer tycker olika, men de är överens om en sak: efter sex års ålder blir både narkosen och själva operationen farligare för hälsan. Denna idé är alltid läglig, det enda är, om din kanin är över två år gammal, är det värt att göra en preliminär undersökning, särskilt av det kardiovaskulära systemet. Undersökningen kan kosta dig mycket mer än själva operationen, men den kan avslöja orsaker till varför operationen kan vara farligare för ditt husdjur. Förundersökning är särskilt viktig för valet av anestesi.
Hur avgör man om en hona kastrerades av tidigare ägare eller en uppfödare?
Det är stor sannolikhet att honan inte blev steriliserad. Du kan raka nedre delen av magen och se om det finns ett ärr där. Men modern teknik tillåter veterinärer att utföra sådana operationer utan ärrbildning. Det finns en chans att veterinären kommer att sätta ett märke på buken, vilket indikerar att operationen utfördes, men detta är osannolikt. Därför är det enda sättet att kontrollera denna operation till.
Vilka frågor ska jag ställa till en veterinär på en veterinärklinik?
Hur många kaninägare kontaktar dig per år?
Hur många kastrater har denna veterinär gjort under det senaste året?
Hur stor är andelen framgångsrika transaktioner? 90 % av framgångsrika operationer är en för liten andel för denna typ av operationer. Varje läkare, veterinär eller människa, förlorar en patient av misstag, vanligtvis på grund av en odiagnostiserad sjukdom eller åkomma. Veterinärer över hela landet (USA) som kastrerade/kastrerade kaniner för House Rabbit Society miste livet på mindre än 0,5 % av det totala antalet opererade djur. – Om det fanns dödsfall, vad var orsaken?
Tar läkaren bort både äggstockarna och livmodern? (veterinär måste ta bort båda organen)
Gör läkaren "öppen" eller "stängd" kastrationsoperation? (Stängt är att föredra - låt din läkare förklara skillnaden.)
Kommer den kirurgiska passagen (ingången) till testiklarna att göras genom pungen eller genom buken? (Passering genom bukhålan ökar i onödan trauman hos kaninhanen).
Kräver veterinären att djuret ska avstå från att äta och dricka innan operationen? (Det är bäst att inte göra detta - en kanin kan inte kräkas, så detta är inte att frukta under operationen, och det ska inte tillåtas att helt tömma kaninens matsmältningskanal).
Vilka bedövningsmedel kommer att användas? (Många veterinärer har varit mycket framgångsrika med att utföra operationer med ett annat bedövningsmedel än isofluran. Men efter dem kommer kaninen att vara som full ("hängd över"), och kommer med största sannolikhet inte att kunna äta på en lång tid efter operationen , vilket i sin tur kommer att orsaka allvarliga problem, om du inte tar hand om dem i tid.
Diskutera operativ och postoperativ vård med din veterinär. Ta reda på hur problem kommer att identifieras, hur ofta kommer veterinären eller hans assistent att kunna besöka ditt barn? Kommer de att göra något för att identifiera möjliga postoperativa problem? Vilken typ av vård kommer att ges till ditt husdjur omedelbart efter operationen: syre, värme, lugn (skällande hundar och jamande katter i närliggande burar är inte det bästa alternativet). Vad ska läkarna göra för att få kaninen att leva igen?! Fråga frågor! Detta kommer att få veterinärens uppmärksamhet. Låt honom veta att du är orolig för ditt husdjurs hälsa och kommer att strikt övervaka hans handlingar.
Vilken pre- och postoperativ vård ska ges till en kanin?
Ge din kanin acidophilus ett par dagar före operationen, bara för att se till att kaninens matsmältningssystem är bra.
Ändra inte hans kost på något sätt. Efter operationen, ge även acidophilus tills aptiten återgår till det normala.
Kontrollera sömmar dagligen. Efter kastrering kan pungen fyllas med vätska. En varm kompress kommer väl till pass, men oroa dig inte för mycket. Om det finns en antydan till infektion, ta kaninen till veterinären omedelbart.
Håll den opererade honan åtskild från hanarna(kastrerad eller inte spelar ingen roll) eftersom hon kan bli allvarligt skadad om hanen försöker täcka henne. Efter operationen, se till att det är tyst och lugnt så att kaninen inte blir rädd och inte får panik, provocera inte fram akrobatiska piruetter utan låt kaninen röra sig fritt på den beboeliga platsen - kaninen själv vet vad som kommer att göra ont honom och vad kommer inte.
Många veterinärer lämnar kaniner på kliniken över natten. Om veterinären tillåter dig att ta hem kaninen, måste du veta följande:
-Många hanar som återvänder hem efter operationen hoppas kunna hitta en utsökt middag, se till att de har sina favoritpellets, vatten och ett gäng färskt hö (bra färsk alfalfa hjälper kaninen att återfå aptiten).
-Många honor föredrar att lämnas ifred, de visar ingen aptit och kommer att sitta tysta längst in i buren eller i det hörnet av huset där de kan vara säkra på att de inte blir störda.
Nästa morgon eller kvällen dagen efter operationen är det nödvändigt att kaninen äter något. Det spelar ingen roll vad och hur mycket, för med intag av mat kommer matsmältningskanalen att fortsätta att fungera. Om kaninen fortfarande inte äter, förbered som en sista utväg en blandning av kaninpellets (1 del pellets och 2 delar vatten, mal noggrant i en mixer, tillsätt acidophilus och mata i små portioner genom en spruta (utan nål) ) från sidan av munnen en kanin). Honan kan av misstag ta bort stygnen. Sy igen och gör sedan ett bandage genom att vira en bordshandduk runt hennes mage och fästa den med ett elastiskt bandage. Se till att kaninen kan andas fritt, men att bandaget sitter ordentligt fast.

UDC 619:636.92:615.211

Injicerbara läkemedel och deras kombinationer som används för anestesi av kaniner

Injicerbara läkemedel används för att introducera kaniner i anestesi under olika diagnostiska och terapeutiska procedurer. Deras användning är möjlig både självständigt och före inhalationsläkemedel. Injektionsanestesi, till skillnad från inandning, kräver ingen speciell utrustning, av denna anledning tvingas många veterinärer att använda denna metod. För närvarande används oftare olika kombinationer av läkemedel för injektion och inhalationsanestesi.

Den samlade erfarenheten visar att många läkemedel som används för sedering, anestesi och analgesi även kan användas för kaniner, men effektiva och säkra doser av läkemedel, deras farmakodynamik och användningen av läkemedelskombinationer har betydande egenskaper. Några preparat och deras kombinationer, vars effekt på kaninernas organism har studerats och som kan vara av intresse för veterinärer i vårt land, beskrivs nedan.

Acepromazin ( Acepromazinmaleat) - ett derivat av fenotiazin, har en dämpande effekt på det centrala nervsystemet. Det är en dopaminhämmare, en alfa-adrenerg blockerare med svag antimuskarin aktivitet. Det viktigaste när du använder acepromazin i veterinärmedicin är dess lugnande effekt, ytterligare inkluderar antiarytmisk effekt och kramplösande effekt. Det används ofta för premedicinering hos djur av många arter. Acepromazin har en hypotensiv effekt och har ingen analgetisk aktivitet. Dos för kanin som lugnande medel 1 mg/kg im, effekt bör ske inom 10 minuter och vara 1-2 timmar . Ghaffari MS et al., (2009) fann att acepromazin vid normal dos minskade tårproduktionen hos kaniner. . Hos kaniner kan acepromazin användas som premedicinering före gasanestesi. Den kan användas i kombination med butorfanol för bättre sedering.

Xylazin(Xylazine) - är en alfa 2-adrenerg antagonist, har en måttlig lugnande och mindre smärtstillande effekt på kaniner. Orsakar avslappning av skelettmuskler genom en central verkan. Tidigare användes det som ett enda läkemedel eller i kombination med ketamin. Denna kombination orsakar andnings- och cirkulationsdepression och vid höga doser hjärtarytmi och hög dödlighet hos kaniner. Atipamezol, en alfa-adrenerg blockerare, kan användas som en antagonist för att stoppa effekten av xylazin.

Medetomidin(Medetomidin (Domitor, Pfizer) är en mer specifik alfa 2-agonist än xylazin med färre biverkningar. Den är betydligt dyrare och kräver högre doser hos kaniner än hos andra djurarter. Medetomidin kan användas som premedicinering eller i kombination med ketamin för kirurgisk anestesi... Medetomidin orsakar sammandragning av de perifera kärlen, förändrar blodtillförseln till slemhinnorna, så att det felaktigt kan fastställas att djuret har cyanos. När man använder medetomidin utvecklas ofta hypoxi, så att hela anestesiperioden kräver användning av syre.

Medetomidininducerad vasokonstriktion kan störa pulsoximetri och venpunktion för blodprovstagning och vätskebehandling. Detta läkemedel orsakar en bra avslappning av struphuvudet, vilket underlättar endotrakeal intubation. Det orsakar inte andningsdepression och återhämtning sker vanligtvis inom tre timmar. Återhämtningen kan påskyndas genom användning av atipamisol.

Butorfanol(Butorfanol) är en syntetisk opioidreceptorantagonist. Den smärtstillande effekten är 3-5 gånger större än hos morfin hos människor och mer än 30 gånger hos råttor. Hos kaniner orsakar butorfanol analgesi och mild sedering, orsakar inte andningsdepression om inte höga doser används. . Appliceras för att lindra postoperativ smärta i en dos på 0,4 mg / kg oralt var 4-6:e timme. Flera studier har visat att användning av höga doser butorfanol ger mindre smärtstillande effekt än lägre doser. Elimineringshalveringstiden för butorfanol hos kaniner vid en dos på 0,5 mg/kg är 1,64 timmar efter intravenös administrering och 3,16 timmar efter subkutan administrering. Butorfanol kan användas för att vända de andningsdepressiva effekterna av μ-agonister som fentanyl, morfin och pefidin. Butorfanol (0,05 mg/kg SC eller IM) används i kombination med medetomidin och ketamin för kirurgisk anestesi. Det kan också användas i kombination med acepromazin för sedering . Denna kombination orsakar vasodilatation, vilket underlättar blodprovstagning och intravenösa injektioner.

Propofol(Propofol) är ett kortverkande hypnotiskt läkemedel utan likhet med läkemedel för allmän anestesi, verkningsmekanismen är inte klarlagd . Som ett läkemedel som används för induktion av anestesi, har det många fördelar inklusive djup hypnotisk effekt och terapeutisk bredd, snabb insättande av verkan och snabb återhämtning. Upprepade doser ackumuleras inte och propofol kan användas för att upprätthålla anestesi genom kontinuerlig infusion. Baumgartner CM et al. (2009) använde för detta ändamål propofol i en dos på 4,0-8,0 mg/kg intravenöst, för att upprätthålla anestesi 1,2-1,3 mg/kg/min. . En dos på 5-14 mg/kg ger tillräckligt med tid för en erfaren anestesiläkare att utföra intubation. Efter administrering är kortvarig apné möjlig, och när höga doser används är andningsstillestånd möjligt.

Studier av Dikmen B. et al. (2010) visade att användningen av propofol är att föredra framför användningen av ketamin hos djur med njurinsufficiens. . ZhuT et al. (2008) fann att propofol förbättrar blodflödet i levern . Enligt Fudickar A. et al. (2009) orsakar administreringen av propofol sådana negativa konsekvenser som akut bradykardi, asystoli, hyperlipemi och metabol acidos, rabdomyolys och myoglobinuri, som beskrivs som Propofol infusionssyndrom (PRIS). Propofol rekommenderas inte för långvarig anestesi hos kaniner. I experimenten av Chen WH et al. (2006) hade propofol en direkt effekt på hjärtat hos kaniner, vilket orsakade en kraftig minskning av blodtrycket och bradykardi.

Ketamin(Ketamin) är ett dissociativt läkemedel som används som enda läkemedel för induktion till anestesi eller i kombination med andra läkemedel för induktion och underhåll av anestesi. Ketamin har en sympatomimetisk effekt som ökar hjärtfrekvensen, hjärtminutvolymen och blodtrycket. Intramuskulär administrering av ketamin i en dos av 40 mg/kg efter 6,0 +/- 0,5 minuter orsakade anestesi hos kaniner under en varaktighet av 36,0 +/- 0,9 minuter. Preliminär intramuskulär administrering av vitamin C i doser på 30, 60 och 240 mg/kg minskade tiden för induktion till anestesi och förlängd anestesi till 5,0 +/- 0,06 och 37,0 +/- 0,7; 4,0 +/- 0,5 och 39,0 +/- 0,6; 2,0 +/- 2,3 respektive 44,0 +/- 0,8 minuter .

Studier har visat att användning av ketamin i en dos på 10 mg/kg intravenöst hos kaniner med ryggmärgsskada skyddar den från ischemi och förhindrar en minskning av antioxidantnivåerna. .

Ketamin eliminerar inte ögon-, larynx- och sväljereflexerna. Dålig muskelavslappning gör ketamin olämpligt att användas som ett enda medel för anestesi före operation, det används i kombination med xylazin eller andra läkemedel. Kombinationer av ketamin/diazepam och ketamin/acepromazin ökar det intraokulära trycket hos kaniner.

Tiletamin/zolazepam(tiletamin / zolazepam) - tiletamin - ett injicerbart bedövningsmedel, kemiskt likt ketamin, zolazepam - ett svagt diazepin lugnande medel. Den farmakologiska effekten av det kombinerade läkemedlet liknar den hos ketamin och diazepam. Lämpligheten av tiletamin/zolazepam för kaninbedövning studerades av Brammer DW et al. (1991). Intramuskulär administrering av 32 och 64 mg/kg av läkemedlet orsakade inte anestesi och ledde till en nefrotoxisk effekt med utveckling av njursvikt inom 5 dagar. Forskarna drog slutsatsen att detta läkemedel är kontraindicerat hos kaniner. . Nefrotoxiciteten av tiletamin/zolazepam hos kaniner fastställdes också i Doerning BJ-studien. et al. (1992). Misslyckandet med tiletamin/zolazepam att inducera anestesi hos kaniner är från Dupras J. et al. (2001) . Samtidigt är det nödvändigt att ta hänsyn till omöjligheten av laglig användning av många droger som används över hela världen i vårt land. Om veterinärkliniken inte är utrustad för att använda inhalationsanestesi och inte har tillstånd att använda ketamin, är tiletamin/zolazepam ett av få läkemedel att välja på och måste kombineras med andra läkemedel.

Ketamin och xylazin.

För minimalt invasiva ingrepp som inte varar mer än 30-40 minuter, administreras ketamin i en dos av 35 mg/kg blandat med xylazin 5 mg/kg intramuskulärt eller subkutant . När kaninen är bedövad kan den intuberas och vid behov anslutas till en ventilator. Upprätthållande av anestesi i upp till 3 timmar tillhandahålls genom intravenös administrering av en blandning av ketamin / xylazin (10 + 2 mg / kg).

Ketamin, xylazin och acepromazin.

Hobbs BA. et al. (1991) fann att kombinationen av ketamin/xylazin med acepromazin är att föredra om en lång operation behövs, i deras studie var anestesitiden 60-120 minuter. Men denna kombination, som gavs intramuskulärt, orsakade perineural inflammation och fibros hos 4 av 6 kaniner i en studie från 1999 av Vachon P. .

medetomidin och ketamin.

En blandning av medetomidin / ketamin i en dos av 0,35 mg / kg + 5 mg / kg intravenöst ger kirurgisk anestesi i minst 35 minuter. Intravenös administrering av atipamezol stoppar effekten av dessa läkemedel. Studier på kaniner (Kim MS et al. 2004) har visat att en lika stor eller dubbel dos av atipamisol är optimal för att vända anestesi. .

Ketamin, medetomidin och isofluran.

Ketamin i en dos på 15 mg/kg och medetomidin 0,25-0,5 mg/kg subkutant eller intramuskulärt i kombination med isofluran 1,5-2,0% ger tillräcklig grad av anestesi för orkiektomi och ovariektomi. Subkutan injektion är lättare att tolerera, men efter intramuskulär injektion går induktionen i anestesi snabbare. Atipamezol är en effektiv antagonist, vid en dos på 0,5-1,0 mg / kg verkar den snabbare när den administreras intramuskulärt jämfört med subkutant, och påskyndar återhämtningen av kaninen.

Ketamin och xylazin med butorfanol.

I en studie av Marini RP et al. (1992) användes ketamin/xylazin i en dos av 35 mg/kg + 5 mg/kg tillsammans med butorfanol 0,1 mg/kg. Inkluderingen av butorfanol i denna kombination förlängde anestesin med 1,4-1,6 gånger från 77 till 99 minuter. .

Medetomidin, ketamin och butorfanol med isofluran.

En kombination av medetomidin, ketamin och butorfanol används för korta procedurer som trimning av framtänder eller röntgen. Det kan också användas för att inducera anestesi före användning av inhalationsanestesi för längre procedurer såsom molarer, borttagning av incisiver, intubation är nödvändig i dessa fall, eftersom användningen av en ansiktsmask inte är möjlig. Vi rekommenderar även inhalationsanestesi vid tvätt av tårkanalen.

Medetomidin i en dos på 0,2 mg/kg i kombination med 10 mg/kg ketamin och 0,5 mg/kg butorfanol administreras subkutant. Detta uppgår till 0,2 ml/kg Domitor (Pfizer), 0,1 ml/kg ketamin och 0,05 ml/kg Torbugesic (Fort Dodge). Injektionen är vanligtvis smärtsam, effekten av läkemedlen börjar efter 5-10 minuter och varar cirka 20 minuter. Fullständig återhämtning sker inom 2-4 timmar.

I slutet av operationen kan effekten av medetomidin avlägsnas med atipamezol 1 mg/kg (0,1 ml/kg) (Antisedan (Pfizer) Verkningstiden för atipamezol är 15-40 minuter. Den smärtstillande effekten av medetomidin är avlägsnas även med atipamezol.bedövning sker efter 1-2 timmar.

Tiletamin/zolazepam och xylazin.

Dupras J. et al. (2001) studerade möjligheten att använda kombinationen tiletamin/zolazepam i en dos av 20 mg/kg i kombination med xylazin 3 mg/kg. när det administreras intramuskulärt. Introduktionen till anestesi varade cirka 3 minuter, varaktigheten av anestesin var i genomsnitt 109,4 minuter. I samband med xylazins förmåga att orsaka betydande syrebrist, pekar forskarna på den obligatoriska tillförseln av syre till kaninen.

Razina A.V. et al (2010) rekommenderar intramuskulär administrering av rometar i en dos på 4,0-6,0 mg/kg, följt (efter 20 minuter) av intramuskulär administrering av tiletamin/zolazepam i en dos på 5-10 mg/kg. Efter 5 min. Efter intramuskulär injektion av zoletil inträffade fullständig muskelavslappning, hornhinnereflexen och smärtkänsligheten saknades, pupillen vidgades. Bedövningen varade cirka 30 minuter, efter 1,5 timmar rörde sig kaninen självständigt.

Tabell - Läkemedel och deras kombinationer rekommenderas för sedering och bedövning av kaniner

Förberedelser

Dos (mg/kg)

Handling

Applikationssätt

Handlingens varaktighet

acepromazin

sedering, orsakar inte analgesi

acepromazin + butorfanol

sedering och analgesi

butorfanol + medetomidin + ketamin

anestesi

20-30 minuter, återhämtning 1-4 timmar

ketamin +

xylazin

anestesi

30-40 minuter, återhämtning 1-2 timmar

ketamin +

xylazin +

butorfanol

anestesi

40-60 minuter

återhämtning 1-2 timmar

ketamin +

xylazin +

acepromazin

anestesi

25-40 minuter, återhämtning 1-2 timmar

ketamin +

acepromazin

anestesi

ketamin +

medetomidin

anestesi

minst 35 minuter

propofol

hypnotisk

för att upprätthålla anestesi 1,2-1,3 mg / kg / min

acepromazin + butorfanol +

propofol

sedering och analgesi

att upprätthålla anestesi propofol 1,2-1,3 mg / kg / min

tiletamin/zolazepam + xylazin

anestesi

xylazin +

tiletamin/zolazepam

anestesi

30 min, återhämtning 1,5 timme

Således tillåter för närvarande existerande läkemedel och möjligheten att använda dem i olika kombinationer, i de flesta fall, att välja anestesimetoden i enlighet med kaninens tillstånd, arten och varaktigheten av den planerade operationen. I det här fallet spelar veterinärklinikens utrustning och läkarens erfarenhet en betydande roll.

Veterinärkandidat, docent vid avdelningen för sjukdomar hos fåglar, fiskar, bin och pälsdjur, St Petersburg State Academy of Veterinary Medicine, Centrum för veterinärmedicin Vetus.

Litteratur

Plumb, Donald K. Farmakologiska preparat i veterinärmedicin // M., 2002.- 856 sid.

Razina A.V. Optimering av metoden för generell anestesi hos kaniner / A.V. Razina, A.I. Frolova, M.A. Sergeeva // Aktuella frågor inom veterinärbiologi - 2005. - Nr 1 (5). - S. 32-35

Baumgartner CM, Koenighaus H, Ebner JK, Henke J, Schuster T, Erhardt WD. Kardiovaskulära effekter av fentanyl och propofol på hemodynamisk funktion hos kaniner // Am J Vet Res. 2009 Mar;70(3):409-17.

Brammer DW, Doerning BJ, Chrisp CE, Rush HG. Anestetiska och nefrotoxiska effekter av Telazol i Nya Zeelands vita kaniner // Lab Anim Sci. 1991 okt;41(5):432-5.

Cooper, J.E. Anestesi av exotiska arter. I Manual of Aneasthesia for Small Animal Practice // (A.D.R. Hilbery, red.). British Small Animal Veterinary Association. 1989. - 144 rubel.

Chang C, Uchiyama A, Ma L, Mashimo T, Fujino Y. En jämförelse av effekterna på respiratorisk koldioxidrespons, arteriellt blodtryck och hjärtfrekvens av dexmedetomidin, propofol och midazolam i sevofluranbedövade kaniner // Anesth Analg. 2009 jul;109(1):84-9.

Chen WH, Lee CY, Hung KC, Yeh FC, Tseng CC, Shiau JM. Den direkta hjärteffekten av propofol på intakt isolerat kaninhjärta // Acta Anaesthesiol Taiwan. 2006 Mar;44(1):19-23.

Cruz FS, CarregaroAB, Raiser AG, Zimmerman M. Total intravenös anestesi med propofol och S(+)-ketamin hos kaniner // Vet Anaesth Analg. 2010 Mar;37(2):116-22.

Dikmen B, Yagmurdur H, Akgul T, Astarci M, Ustun H, Germiyanoglu C. Förebyggande effekter av propofol och ketamin på njurskada vid unilateral ureterobstruktion // J Anesth. 2010 feb;24(1):73-80.

Doerning BJ, Brammer DW, Chrisp CE et al: Nephrotoxicity of Tiletamine in New Zealand White rabbits // Lab Anim Sci, 1992; 42(3):267-269.

Dupras J, Vachon P, Cuvelliez S, Blais D. Anesthesia of the New Zealand kanin med kombinationen av tiletamin-zolazepam och ketamin-midazolam med eller utan xylazin // Can Vet J. 2001 Jun;42(6):455- 60.

Elsa A, Ubandawaki S. Ketaminanestesi efter premedicinering av kaniner med vitamin C // J Vet Sci. 2005 sep;6(3):239-41.

Flecknell, P.A. Lindring av smärta hos försöksdjur // Lab Animal., 1984; 18, 147-160.

Flecknell, P.A. Anestesi // I Manual of Rabbit Medicine and Surgery. 2000; (P.A. Flecknell, red.) s. 103-116.

Flecknell, P.A., John, M., Mitchell, M. et al. Neuroleptanalgesi i kaninen // Lab Animal., 1983; 17, 104-109.

Fudickar A, Bein B. Propofol infusionssyndrom: uppdatering av klinisk manifestation och patofysiologi // Minerva Anestesiol. 2009 maj;75(5):339-44.).

Ghaffari MS, Moghaddassi AP, Bokaie S. Effekter av intramuskulärt acepromazin och diazepam på tårproduktion hos kaniner // Vet Rec. 2009 jan 31;164(5):147-8.

Ghaffari MS, Moghaddassi AP. Effekter av kombinationer av ketamin-diazepam och ketamin-acepromazin på intraokulärt tryck hos kaniner // Vet Anaesth Analg. 2010 maj;37(3):269-72.

Hellebrekers, L.J., de Boer, E.J., van Zuylen, M.A., Vosmeer H. En jämförelse mellan medetomidin-ketamin och medetomidin-propofolanestesi hos kaniner // Lab Anim., 1997; 31, 58-69.

Hobbs BA, Rolhall TG, Sprenkel TL, Anthony KL. Jämförelse av flera kombinationer för anestesi hos kaniner // Am J Vet Res. 1991 maj;52(5):669-74.

Kim MS, Jeong SM, Park JH, Nam TC, Seo KM. Återföring av medetomidin-ketamin kombinationsanestesi hos kaniner av atipamezol // Exp Anim. 2004 okt;53(5):423-8.

Marini RP, Avison DL, Corning BF, Lipman NS. Ketamin/xylazin/butorfanol: en ny anestesikombination för kaniner // Lab Anim Sci. 1992 feb;42(1):57-62.

Martinez MA, Murison PJ, Love E. Induktion av anestesi med antingen midazolam eller propofol hos kaniner premedicinerade med fentanyl/fluanison // Vet Rec. 2009 juni 27;164(26):803-6.

Mason D.E. Anestesi, analgesi och sedering för små däggdjur // Hos illrar, kaniner och gnagare, klinisk medicin och kirurgi. (E.V. Hillyer, K.E. Quesenberry, red.). 1997. - s. 378-391.

Murphi KL, Roughan JV, Baxter MG, Flecknell PA. Anestesi med en kombination av ketamin och medetomidin hos kanin: effekt av premedicinering med buprenorfin // Vet Anaesth Analg. 2010 maj;37(3):222-9. Epub 2010 10 mars.

Ohya M, Taguchi H, Mima M, Koumoto K, Fukae T, Uchida M. Effekter av morfin, buprenorfin och butorfanol på luftvägsdynamiken hos kaninen // Masui. 1993 apr;42(4):498-503.

Orr HE, Roughan JV, Flecknell PA. Bedömning av ketamin- och medetomidinbedövning hos tamkanin // Vet Anaesth Analg. 2005 sep;32(5):271-9.

Portnoy, L.G., Hustead, D.R. Farmakokinetik för butorfanoltartrat i kaniner // Am J Vet Res., 1992; 53, 541.

Stephen J. Birchard, Robert G. Sherding - Saunders Manual of Small Animal Practice, tredje upplagan, 2005.- 2008 sid.

Vachon P. Självstympning hos kaniner efter intramuskulära ketamin-xylazin-acepromazininjektioner // Can Vet J. 1999 Aug;40(8):581-2.

Wixson, S.K. Anestesi och analgesi. I The Biology of the Laboratory Rabbit, Academic Press, 2nd edn. 1994 (P.J. Manning och D.H. Ringler, red.). sid. 87-109.

Yershov AL, Jordan BS, Fudge JM, Dubick MA. Inverkan av ventilationssättet på ketamin/xylazinbehov hos kaniner // Vet Anaesth Analg. 2007 maj;34(3):157-63.

Yu QJ, Zhou QS, Huang HB, Wang YL, Tian SF, Duan DM. Skyddande effekt av ketamin på ischemisk ryggmärgsskada hos kaniner // Ann Vasc Surg. 2008 maj-juni;22(3):432-9.

Zhu T, Pang Q, McCluskey SA, Luo C. Effekt av propofol på leverns blodflöde och syrebalans hos kaniner // Can J Anaesth. 2008 Jun;55(6):364-70.

Läser in...Läser in...