Anestesi untuk kelinci untuk operasi. Kelinci dan anestesi - kelinci dekoratif dan kerdil

Melentiev Oleg Nikolaevich, Kandidat Ilmu Kedokteran Hewan, Dokter Hewan di Pusat Kedokteran Hewan Vetus.

Karakteristik biologis kelinci yang signifikan, yang membedakannya dari hewan domestik lainnya, juga harus diperhitungkan pada periode pascaoperasi. Untuk pemulihan setelah anestesi, kelinci ditempatkan di tempat tidur yang hangat atau di kandang yang dipanaskan dengan lantai yang hangat (Gbr. 1, 3), diperlukan suhu sekitar 35 ° C. Segera setelah suhu tubuh kelinci stabil dan kelinci dapat duduk di atas cakarnya, pemanasan harus dikurangi menjadi 26-28°C, karena kelinci dalam kondisi ini tidak dapat sering bernapas dan rentan terhadap hipertermia. Tidak adanya iritasi eksternal dan kondisi lingkungan yang nyaman memfasilitasi pemulihan setelah anestesi. Hanya kelinci yang sepenuhnya terbangun yang harus disimpan pada suhu kamar.


Untuk pemeliharaan, yang terbaik adalah memilih ruangan di mana tidak ada hewan lain dan baunya tidak ada. Segera setelah kelinci cukup pulih untuk makan dan minum, perlu memberinya air dan makanan. Segera setelah bangun tidur dan seluruh periode pasca operasi, lebih baik memberi jerami, rumput, wortel. Setelah mencabut gigi seri, kelinci perlu diberi makanan lunak, bubur atau parutan. Jerami berkualitas baik juga dapat digunakan sebagai alas untuk meletakkan kelinci di dadanya (Gambar 2).

Teknik operasi yang baik, kecepatan operasi dan bahan jahitan yang tepat mengurangi rasa tidak nyaman pada area luka operasi, tetapi pada kebanyakan kasus diperlukan analgesia pascaoperasi. Menilai rasa sakit pada kelinci bisa jadi sulit, karena mereka tidak menunjukkan banyak tanda-tanda rasa sakit yang ditemukan pada spesies lain, dan duduk dengan tenang di dekat bagian belakang kandang, tidak responsif terhadap lingkungan mereka. Kelinci sangat sensitif terhadap rasa sakit, terutama setelah operasi perut dan pencabutan gigi seri. Nyeri dan stres merangsang sistem saraf simpatik dan mengurangi motilitas gastrointestinal. Penurunan motilitas usus merupakan pemicu perkembangan kaskade proses merugikan yang menyebabkan lipidosis hati dan kematian.

Dimungkinkan untuk menentukan adanya rasa sakit dengan mengamati hewan, tetapi ini membutuhkan komunikasi yang erat dengannya sebelum operasi dan pengetahuan tentang karakteristik perilakunya. Parameter fisiologis seperti suhu tubuh, detak jantung, dan pernapasan berubah di bawah pengaruh rasa sakit, tetapi untuk menentukan parameter ini perlu menarik kelinci keluar dari kandang, yang dengan sendirinya dapat menyebabkan mereka berubah. Kelinci yang kesakitan tidak mendekati dinding depan kandang saat melihat makanan. Mereka tidak berdandan dan mungkin menjadi agresif terhadap hewan lain yang dipelihara di kandang yang sama. Nyeri di rongga perut dapat dimanifestasikan dengan mengadopsi posisi tubuh yang membungkuk dan menggertakkan gigi. Terkadang kelinci berperilaku gelisah, secara berkala memantul dan berputar di sepanjang bagian bawah kandang. Konsekuensi dari rasa sakit adalah penolakan total untuk memberi makan.

Analgesia pada hewan laboratorium, termasuk kelinci, telah dipelajari secara ekstensif. Sistem penilaian nyeri telah dikembangkan untuk menentukan efektivitas analgesik, meskipun perbedaan individu dapat mempengaruhi persepsi nyeri, terutama intensitas sedang. Dosis obat yang diperlukan untuk memberikan analgesia tergantung pada iritan, sehingga perlu untuk memantau kelinci dan menentukan responnya terhadap analgesia. Nyeri merupakan kondisi yang mengancam nyawa pada kelinci, sehingga semua kelinci yang kesakitan harus diberikan analgesia.

Analgesia adalah "tidak adanya sensitivitas nyeri atau menghilangkan rasa sakit tanpa kehilangan kesadaran". Sebagai respons terhadap nyeri dan stresor lainnya, opioid endogen dilepaskan dan mengurangi sensitivitas nyeri. Peradangan atau hipoksia di tempat cedera menyebabkan pelepasan zat nosiseptif seperti kinin, yang pada gilirannya merangsang pembentukan prostaglandin.

Analgesik opioid adalah obat kerja sentral yang digunakan untuk nyeri hebat, yang memiliki efek spesifik pada sistem saraf pusat. Efek farmakologis dikaitkan dengan efek pada reseptor opioid pada sistem saraf pusat. Berbagai reseptor opioid telah ditemukan di otak, sumsum tulang belakang, dan jaringan lain, termasuk saluran pencernaan. Opioid menyebabkan efek tertentu tergantung pada jenis reseptor, dan ada perbedaan spesies dalam aksinya:

– Reseptor - (mu) terutama bertanggung jawab atas analgesia supraspinal, euforia, depresi pernafasan dan menyebabkan ketergantungan fisik pada manusia;
- reseptor k- (kappa) terutama bertanggung jawab untuk analgesia spinal, miosis dan sedasi;
– Reseptor - (sigma) bertanggung jawab atas disforia (cemberut, mudah tersinggung, suasana hati marah dengan peningkatan kecemasan sebagai respons terhadap stimulus eksternal), halusinasi, eksitasi pernapasan, dan berbagai efek vasomotor.

Reseptor lain, seperti reseptor - (delta), ditemukan di berbagai jaringan. Efek pada reseptor dan k paling penting untuk menghilangkan rasa sakit.
Intervensi lain seperti depresi pernapasan, sedasi, atau efek pada motilitas gastrointestinal mungkin bermanfaat atau tidak tergantung pada situasi di mana obat ini digunakan.

Pada kelinci, analgesik narkotik digunakan untuk memberikan analgesia dan, dalam beberapa kasus, anestesi. Mereka juga dapat digunakan setelah anestesi untuk memperpanjang efek analgesik. Di sisi lain, analgesik narkotik menyebabkan depresi pernapasan dan mental, hipotermia, dan bradikardia pada kelinci.

Buprenorfin adalah analgesik opioid kerja lama yang kuat, agonis parsial. Pada kelinci, digunakan untuk analgesia jangka panjang untuk meredakan nyeri akut atau kronis pada organ dalam dengan dosis 0,02-0,05 mg / kg secara oral atau intramuskular setiap 6-12 jam; 0,5 mg/kg rektal setiap 12 jam. Buprenorfin juga digunakan untuk mencegah efek depresan pernapasan dari fentanil setelah operasi ketika kombinasi fentanil/fluanison dan benzodiazepin digunakan untuk anestesi.

Butorphanol adalah antagonis reseptor opioid sintetik. Pada kelinci, butorphanol memberikan analgesia dan sedasi ringan, dan tidak menyebabkan depresi pernafasan kecuali digunakan dalam dosis tinggi. Dioleskan untuk meredakan nyeri pasca operasi dengan dosis 0,4 mg/kg per oral setiap 4-6 jam.

Penelitian telah menunjukkan bahwa penggunaan butorphanol dosis tinggi menyebabkan efek analgesik yang lebih kecil daripada dosis yang lebih rendah. Waktu paruh eliminasi butorfanol pada kelinci dengan dosis 0,5 mg/kg adalah 1,64 jam setelah pemberian intravena dan 3,16 jam setelah pemberian subkutan. Butorphanol dapat digunakan untuk membalikkan efek depresan pernapasan dari -agonis seperti fentanil, morfin, dan pefidin.

Tramadol adalah analgesik opioid yang berasal dari sikloheksanol. Agonis reseptor -, - dan k non-selektif di SSP. Ini adalah rasemat (+) dan (-) isomer (50% masing-masing), yang terlibat dalam efek analgesik dalam berbagai cara. Isomer (+) adalah agonis reseptor opioid murni, memiliki tropisme rendah dan tidak memiliki selektivitas yang jelas untuk berbagai subtipe reseptor. Isomer (-), menghambat ambilan saraf norepinefrin, mengaktifkan pengaruh noradrenergik yang menurun. Karena ini, transmisi impuls nyeri ke zat agar-agar sumsum tulang belakang terganggu, yang menyebabkan efek sedatif. Dalam dosis terapeutik, praktis tidak menekan pernapasan. Ini memiliki efek antitusif. Lebih dari 80% tramadol diekskresikan pada kelinci melalui ginjal. Tidak ada efek samping setelah pemberian tramadol oral dengan dosis 11 mg/kg. Waktu paruh adalah 145,4 +/- 81,0 menit; konsentrasi maksimum dalam plasma darah adalah 135,3 +/- 89,1 ng / ml. Dosis yang dianjurkan untuk kelinci adalah 2,0-4,0 mg/kg setiap 12 jam.

Fentanil / fluanisone (Fentanyl / fluanisone). Fentanil adalah agonis opioid kuat yang bekerja terutama pada reseptor dan menyebabkan analgesia, depresi pernapasan dan, pada manusia, euforia. Kekuatan aksi analgesik adalah 20-100 kali lebih tinggi dari morfin. Efek analgesiknya ditingkatkan oleh fluanisone, yang juga menghilangkan efek depresan pada pernapasan. Menurut banyak penulis, ini adalah obat terbaik yang digunakan pada kelinci untuk sedasi dan anestesi, analgesia dalam berlangsung 3 jam setelah pemberian. Kombinasi fentanyl/fluanisone digunakan untuk premedikasi, sedasi dan analgesia kuat atau, dalam kombinasi dengan midazolam, untuk anestesi.

Dalam beberapa kasus, obat antiinflamasi nonsteroid (NSAID), yang menghambat sintesis siklooksigenase, prostaglandin, dan zat serupa, dapat menjadi alternatif analgesik opioid. Siklooksigenase adalah enzim yang mendorong pembentukan prostaglandin dari asam arakidonat di membran sel. Ada dua isomer siklooksigenase: COX-1 dan COX-2. Semua NSAID memiliki sifat analgesik, antipiretik, dan anti-inflamasi. Efek toksik potensial mereka dikaitkan dengan isomer siklooksigenase. COX-1 memiliki sejumlah sifat fisiologis, dan penghambatan COX-1 diyakini bertanggung jawab atas sebagian besar efek toksik NSAID. COX-2 diproduksi di tempat inflamasi oleh aksi mediator inflamasi.
Carprofen menghambat siklooksigenase lebih sedikit dan karena itu kurang beracun, ia memiliki mekanisme aksi yang berbeda. Struktur molekul juga mempengaruhi aksi farmakologis, terutama NSAID yang termasuk dalam subkelompok asam 2-arilproprionat (turunan asam propionat: carprofen, ketoprofen dan vedaprofen). Beberapa spesies hewan memiliki metabolisme yang berbeda. Secara umum, interval penggunaan NSAID pada bayi baru lahir dan hewan tua harus lebih lama untuk mengurangi toksisitas.

Penekanan regulasi normal oleh prostaglandin dapat menyebabkan perfusi ginjal yang tidak mencukupi pada pasien hipotensi dan gagal ginjal akut. Ini terjadi selama anestesi, terutama jika ada kehilangan darah yang signifikan, maka tekanan darah harus dipertahankan dengan memasukkan jumlah larutan yang diperlukan. Dianjurkan untuk istirahat 24 jam antara penggunaan NSAID dari berbagai jenis.
NSAID dapat digunakan untuk analgesia pasca operasi dan pengobatan osteoartritis kronis. Pengaruh NSAID pada sintesis prostaglandin pada kelinci adalah signifikan. Prostaglandin merangsang pelepasan feses lunak pada kelinci dengan menghambat motilitas usus proksimal dan merangsang motilitas distal.

Aspirin (Aspirin) menghambat siklooksigenase, yang menyebabkan penurunan sintesis prostaglandin dan tromboksan, mengurangi agregasi trombosit dan peradangan. Aspirin adalah analgesik yang efektif untuk kelinci, digunakan sebagai pertolongan pertama, sehingga banyak pemilik kelinci memilikinya di rumah. Dosis oral adalah 100 mg/kg. Konsentrasi maksimum dalam serum darah pada kelinci tercapai setelah 1-2 jam. Aspirin dapat menyebabkan penurunan trombosit dan kecenderungan berdarah pada kelinci laboratorium. Sifat analgesik lebih lemah dibandingkan dengan beberapa NSAID lain seperti carprofen dan flunixin.

Carprofen adalah inhibitor siklooksigenase lemah dengan rasio COX-1:COX-2 yang rendah dan toksisitas minimal. Carprofen, karena ketersediaannya, dapat diresepkan setelah operasi untuk semua pasien. Meskipun dapat dikonsumsi secara oral (1,5 mg/kg 2 kali sehari), penelitian menunjukkan bahwa lebih baik diberikan secara subkutan atau intravena (2-4 mg/kg 1 kali sehari).
Ketika diberikan secara subkutan, mungkin ada efek samping yang terkait dengan kemungkinan masuknya obat ke dalam dermis. Untuk mengurangi jumlah komplikasi, perlu dipastikan bahwa obat telah masuk ke jaringan subkutan, dan bukan ke dalam dermis, dan memijat area injeksi setelah injeksi. Carprofen terutama diindikasikan untuk nyeri akut setelah patah tulang dan cedera.

Flunixin adalah inhibitor siklooksigenase ampuh yang telah berhasil digunakan sebagai agen anti-inflamasi pada sapi dan kuda. Produsen tidak merekomendasikan penggunaannya sampai pasien pulih sepenuhnya dari anestesi umum, karena NSAID ini dapat menyebabkan penurunan aliran darah ginjal. Ini juga tidak dapat diberikan bersama dengan obat nefrotoksik lainnya seperti gentamisin. Flunixin dapat digunakan sebagai obat analgetik dan anti inflamasi pada kelinci dengan dosis 1,1 mg/kg 2 kali sehari secara subkutan.
Yang menarik adalah kemungkinan menggunakan inhibitor siklooksigenase untuk pengobatan enterotoksemia. Elmas M. dkk. (2008) berhasil menggunakan flunixin 2,2 mg/kg dan enrofloxacin 5 mg/kg intravena untuk tujuan ini.

Ketoprofen (Ketoprofen). Ketoprofen telah dijelaskan pada mamalia kecil, termasuk kelinci, sebagai alternatif untuk carprofen dan meloxicam. Oleskan secara oral, dua kali sehari, dengan dosis 1-3 mg/kg.

Meloxicam adalah NSAID dengan rasio COX-1:COX-2 yang rendah. Ini memiliki efek anti-rematik yang kuat dan sedikit potensi untuk menyebabkan iritasi lambung pada hewan dibandingkan dengan NSAID lainnya. Studi toksisitasnya telah menunjukkan tolerabilitas yang baik dan ketahanan yang sangat baik terhadapnya dalam jaringan kelinci.

Pelepasan lambung dari obat ini dan transportasi usus tidak dipengaruhi oleh dosis terapeutik meloxicam, kecuali untuk efek jangka pendek pada keasaman lambung. Dosis secara signifikan lebih tinggi daripada yang direkomendasikan untuk tindakan anti-inflamasi tidak mempengaruhi ekskresi air, elektrolit dan kreatinin selama seluruh periode pengamatan. Setelah pemberian oral tunggal meloxicam dengan dosis 0,3 dan 1,5 mg/kg, konsentrasi plasma maksimum obat tercapai setelah 6-8 jam dan masing-masing sebesar 0,14 dan 3,0 g/ml, menurun ke tingkat yang tidak terdeteksi pada 24 jam. Dengan penggunaan obat selama lima hari, akumulasi tidak diamati, untuk mencapai konsentrasi terapeutik yang diperlukan bila digunakan sekali sehari, diperlukan dosis yang melebihi 0,3 mg / kg. Kelinci dapat diberikan dengan madu bunga untuk analgesia jangka panjang dalam kondisi menyakitkan seperti radang sendi atau spondylosis dengan dosis 0,1-0,2 mg/kg setiap 12 jam.

Tukang kayu J. W. et al. (2009), mempelajari farmakokinetik meloxicam pada kelinci, menemukan bahwa pemberian obat secara oral dengan dosis 0,2-0,3 mg/kg sekali sehari sudah cukup, dan tidak menemukan efek samping setelah menggunakannya selama 10 hari. Konsentrasi maksimum obat dalam plasma pada hari pertama adalah 0,17 mcg/kg, pada hari ke-10 - 0,24 mcg/kg. Selain itu, Salhab A.S. et al. (2001) menemukan bahwa meloxicam dengan dosis 20 mg/kg secara intraperitoneal menghambat ovulasi pada kelinci bila diberikan 2 dan 5 jam setelah koitus.

NSAID dipilih berdasarkan aktivitas analgesik dan anti-inflamasinya. Obat-obatan seperti flunixin dan carprofen memberikan efek analgesik yang sebanding dengan analgesik opioid. Leach M. C. dkk. (2009) mempelajari pengaruh rasa sakit dan stres pada perilaku kelinci setelah ovariohisterektomi dan kemungkinan menggunakan meloxicam pada periode pasca operasi. Ditemukan bahwa untuk analgesia yang cukup dalam kasus kerusakan jaringan lunak, kelinci membutuhkan dosis besar obat (dosis awal - 1 mg / kg, selanjutnya - 0,5 mg / kg / hari) atau kombinasi meloxicam dengan analgesik opioid.
Cooper C.S. dkk. (2009) membandingkan efek pada nafsu makan pada kelinci meloxicam dan buprenorfin selama 7 hari pasca operasi, jumlah feses dan urin, berat badan, dan tingkat analgesia dan menyimpulkan bahwa meloxicam adalah alternatif yang baik untuk buprenorfin dan, bila digunakan, risiko anoreksia dan stasis gastrointestinal minimal.

Untuk memastikan kecukupan anestesi, analgesik opioid dan NSAID dapat digunakan secara bersamaan dengan risiko efek samping yang minimal.
Saat kelinci dilepaskan dari rumah sakit, pemiliknya diinstruksikan untuk memantau dengan cermat perilaku hewan peliharaan, asupan makanan, dan kotoran padatnya. Kelinci harus dibawa untuk pemeriksaan ulang jika belum makan lebih dari 24 jam. Jika pemilik kelinci tidak yakin apakah kelinci makan atau nafsu makannya berkurang, hewan tersebut harus dirawat di rumah sakit untuk observasi lebih lanjut. Kelinci yang tidak mulai makan setelah operasi memerlukan perawatan untuk mencegah atau memperbaiki stasis gastrointestinal dan mengevaluasi kembali resep pascaoperasi.

literatur

Daftar

  1. Plumb, Donald K. Sediaan farmakologis dalam kedokteran hewan // M., 2002. - 856 hal.
  2. Aeschbacher, G. Anestesi kelinci // Ringkasan Pendidikan Berkelanjutan, 1995, 17, 1003-1011.
  3. Carpenter J. W., Pollock C. G., Koch D. E., Hunter R. P. Farmakokinetik meloxicam dosis tunggal dan ganda setelah pemberian oral ke kelinci (Oryctolagus cuniculus) // J Zoo Wildl Med. Desember 2009; 40(4): 601-6.
  4. Cooper C. S., Metcalf-Pate K. A., Barat C. E., Cook J. A., Scorpio D. G. Perbandingan efek samping antara buprenorfin dan meloxicam yang digunakan pasca operasi pada kelinci berikat Belanda (Oryctolagus cuniculus) // J Am Assoc Lab Anim Sci. Mei 2009; 48(3): 279-85.
  5. Elmas M., Yazar E., Uney K., Er Karabacak A., Traş B. Farmakokinetik enrofloxacin dan flunixin meglumine dan interaksi antara kedua obat setelah pemberian bersama intravena pada kelinci sehat dan endotoksemia // Vet J. 2008 Sep; 177(3): 418-24. Epub 2007 17 Juli.
  6. Fujibayashi K., Sakamoto K., Watanabe M., Iizuka Y. Sifat farmakologis dari R-84760, agonis reseptor kappa-opioid baru // Eur J Pharmacol. 1994 11 Agustus; 261(1-2): 133-40.
  7. Flecknell P. A. Menghilangkan rasa sakit pada hewan laboratorium // Lab Anim., 1984; 18, 147-160.
  8. Flecknell P. A. Analgesia pada mamalia kecil // Sem Avian Exotic Pet Med., 1998; 7, 41-47.
  9. Flecknell P. A., Liles J. H., Wootton R. Pembalikan neuroleptanalgesia fentanyl/fluanisone pada kelinci menggunakan campuran agonis/antagonis opioid // Lab Anim. 1989 Apr; 23(2): 147-55.
  10. Green C. J. Kombinasi obat neuroleptanalgesik dalam manajemen anestesi hewan laboratorium kecil // Lab Anim., 1975; 9, 161-178.
  11. Hawkins M. G., Taylor I. T., Craigmill A. L., Tell L. A. Farmakokinetik enantioselektif dari rasemat carprofen pada kelinci putih Selandia Baru // J Vet Pharmacol Ther. 2008 Oktober; 31(5): 423-30.
  12. Hayashida M., Fukunaga A., Fukuda K., Yamazaki S. Y., Arita H., Hanaoka K. Model kelinci untuk evaluasi anestesi bedah dan analgesia: karakterisasi dan validasi dengan anestesi isofluran dan analgesia fentanil // J Anesth. 2004; 18(4): 282-91.
  13. Hubbell J. A., Muir W. W. Evaluasi survei para diplomat American College of Laboratory Animal Medicine tentang penggunaan agen analgesik pada hewan yang digunakan dalam penelitian biomedis // J Am Vet Med Assoc. 1996 1 September; 209(5): 918-21.
  14. Jenkins W. L. Aspek farmakologis obat analgesik pada hewan: gambaran umum // J Am Vet Med Assoc., 1987; 191, 1231-1240.
  15. Karachalios T., Boursinos L., Poultsides L., Khaldi L., Malizos K. N. Efek dari pemberian jangka pendek dari dosis terapeutik rendah agen anti-COX-2 pada penyembuhan patah tulang // Sebuah studi eksperimental pada kelinci. J Bedah Sendi Tulang Br. 2007 Sep; 89(9): 1253-60.
  16. Leach M. C., Allweiler S., Richardson C., Roughan J. V., Narbe R., Flecknell P. A. Efek perilaku ovariohysterectomy dan pemberian meloxicam secara oral pada kelinci yang ditempatkan di laboratorium // Res Vet Sci. 2009 Oktober; 87(2): 336-47. Epub 2009 19 Maret.
  17. Lintz W., Erlaçin S., Frankus E., Uragg H. Biotransformasi tramadol pada manusia dan hewan Arzneimittelforschung. 1981; 31(11): 1932-43.
  18. Miyazaki Y., Horii Y., Ikenaga N., Shimoda M., Kokue E. Kemungkinan mekanisme transpor aktif dalam farmakokinetik flunixin-meglumine pada kelinci // J Vet Med Sci. 2001 Agustus; 63(8): 885-8.
  19. Ohya M., Taguchi H., Mima M., Koumoto K., Fukae T., Uchida M. Efek morfin, buprenorfin dan butorfanol pada dinamika saluran napas kelinci // Masui. 1993 Apr; 42(4): 498-503.
  20. Osterloh G., Friderichs E., Felgenhauer F., Günzler W. A., Henmi Z., Kitano T., Nakamura M., Hayashi H., Ishii I. Studi farmakologi umum pada tramadol, agen analgesik ampuh Arzneimittelforschung. 1978; 28(1a): 135-51.
  21. Portnoy L. G., Hustead D. R. Farmakokinetik butorphanol tartrate pada kelinci // Am J Vet Res., 1992; 53, 541.
  22. Richardson V. C. G. Kelinci Kesehatan, Peternakan dan Penyakit. Blackwell Science Ltd, 2000. - 178 rubel.
  23. Salhab A. S., Gharaibeh M. N., Shomaf M. S., Amro B. I. Meloxicam menghambat ovulasi kelinci // Kontrasepsi. 2001 Juni; 63(6): 329-33.
  24. Farmakologi Klinis Hewan Kecil / Jill Maddison et al. - Elsevier Limited, 2008. - 589 hal.
  25. Stephen J. Birchard, Robert G. Sherding – Saunders Manual of Small Animal Practice, Edisi Ketiga, 2005. – 2008 p.
  26. Souza M. J., Greenacre C. B., Cox S. K. Farmakokinetik tramadol yang diberikan secara oral pada kelinci domestik (Oryctolagus cuniculus). Apakah J Vet Res. 2008 Agustus; 69(8): 979-82
  27. Turner P. V., Chen H. C., Taylor W. M. Farmakokinetik meloxicam pada kelinci setelah dosis oral tunggal dan berulang // Comp Med. Februari 2006; 56(1): 63-7.
  28. Turner P. V., Kerr C. L., Healy A. J., Taylor W. M. Pengaruh meloxicam dan butorphanol pada konsentrasi alveolar minimum isoflurane pada kelinci // Am J Vet Res. Mei 2006; 67(5): 770-4.
  29. Wixson S.K. Anestesi dan analgesia. Dalam The Biology of the Laboratory Rabbit, Academic Press, 2nd edn. 1994 (P.J. Manning dan D.H. Ringler, eds). hal.87–109.

-- [ Halaman 2 ] --

Dalam darah, jumlah eritrosit, kandungan hemoglobin di dalamnya, LED, indeks warna, jumlah leukosit ditentukan, dan leukogram dipelajari sesuai dengan metode yang diterima secara umum dalam hematologi.

Darah untuk mendapatkan serum diambil dari vena jugularis ke dalam tabung reaksi kering sebelum pemberian obat, 24 jam, 1, 3, 7 dan 14 hari setelah percobaan.

Dalam serum darah, berikut ini ditentukan: jumlah glukosa, protein total, aktivitas AST dan ALT, konsentrasi bilirubin total, urea, kreatinin menggunakan penganalisis biokimia semi-otomatis BioChem SA.

Studi elektrokardiografi dilakukan menggunakan elektrokardiograf EK 14 T, perekaman dilakukan pada sadapan kedua; penilaian dilakukan dengan metode yang diterima secara umum dalam kardiologi.

Orchidectomy pada kelinci dilakukan secara tertutup.

Pemeriksaan ultrasonografi organ perut kelinci dilakukan menggunakan pemindai ultrasound veteriner portabel PU 2200 Vet sebelum pemberian obat, 10 menit setelah pemberian larutan 2% xylazine hidroklorida, Zoletil, serta kombinasinya setelah 10, 30, 60, 90, 120, 150 dan 180 menit sesuai dengan metode yang kami kembangkan.

Gambaran morfologi organ perut dinilai pada otopsi kelinci pada periode penelitian yang berbeda: tanpa penggunaan Rometar dan Zoletil (kelompok kontrol), 30 menit setelah pemberian obat ini, 1 hari setelah operasi, dan 7 hari setelah anestesi umum.

Untuk studi histologis, potongan-potongan organ difiksasi dalam formalin netral 10%, bagian histologis disiapkan pada mikrotom kereta luncur setebal 5-7 m, diwarnai dengan hematoxylin dan eosin.

Pengolahan statistik materi digital hasil penelitian dilakukan dengan metode statistik variasi menggunakan paket software Microsoft Excel XP, diturunkan M, m, koefisien reliabilitas P, dengan memperhatikan kriteria Siswa.

Tingkat keandalan indikator relatif terhadap indikator sebelum pengalaman yang ditandai dengan * kurang dari 0,05.

3. HASIL PENELITIAN

3.1. Pemilihan obat dan penilaian derajat umum

anestesi pada kelinci

Studi yang dilakukan memungkinkan untuk menentukan varian anestesi umum yang paling optimal untuk kelinci. Dalam semua kasus, premedikasi dengan larutan xylazine hidroklorida 2% terbukti dibenarkan.

Pengenalan rometar disertai dengan perubahan karakteristik obat dari kelompok ini. Dalam 5-10 menit setelah pemberian obat, hewan menundukkan kepala, sedasi dan penurunan sensitivitas nyeri diamati, namun, kelinci menunjukkan resistensi yang cukup aktif terhadap beberapa manipulasi yang terkait dengan fiksasi pada posisi lateral.

Pemberian jet intravena dari emulsi propofol berair 1% menyebabkan relaksasi otot-otot ekstremitas, tetapi sensitivitas nyeri tetap ada, yang mengesampingkan kemungkinan intervensi bedah.

Menghirup dengan eter menyebabkan tidak adanya refleks dan sensitivitas nyeri dalam 10 menit, nada otot rahang dan kelopak mata - 15 menit. Setelah 30 menit, kelinci mencoba untuk bangun, dan setelah 40 menit mereka dapat secara mandiri mengubah posisi tubuh di luar angkasa.



Penggunaan Zoletil-50 sebagai mononarkosis memberikan relaksasi otot instan dan tidak adanya sensitivitas nyeri dalam waktu 5 menit. Setelah 30 menit, aktivitas motorik kelinci pulih, dan setelah 1 jam mereka dapat bergerak secara mandiri.

Dengan latar belakang sedasi dengan Rometar, pengenalan Zoletil-50 baik secara intramuskular maupun intravena memungkinkan untuk mencapai tahap anestesi bedah. Dalam 25-30 menit setelah intramuskular dan 30-35 menit setelah pemberian intravena, sensitivitas nyeri pulih, setelah 45-60 menit kelinci mencoba untuk bangun, dan dapat bergerak secara mandiri setelah 90 menit.

3.2. Pengaruh obat pereda nyeri dan kombinasinya pada status klinis, morfologi, parameter darah biokimia dan aktivitas jantung kelinci

3.2.1. Efek rometar dan eter pada tubuh kelinci

Premedikasi dengan rometar menyebabkan sedikit peningkatan suhu tubuh pada kelinci dari subkelompok pertama dari kelompok ini, yang digantikan oleh penurunan nilai indikator ini setelah penggunaan eter dan bertahan selama tiga jam.

10 menit setelah pemberian rometar terjadi penurunan denyut nadi dan pernafasan, yang 10 menit setelah penggunaan eter untuk anestesi diganti dengan peningkatan, tetapi sudah 30 menit setelahnya, ada kecenderungan menurun, dan sehari kemudian, nilai detak jantung dan gerakan pernapasan mendekati aslinya.

Dalam komposisi morfologi darah kelinci subkelompok ini, dalam waktu satu jam, ada kecenderungan untuk mengurangi jumlah eritrosit dan kandungan hemoglobin di dalamnya. Setelah sedasi dengan rometar, kandungan leukosit sedikit meningkat, yang digantikan oleh penurunan jumlahnya setelah penggunaan eter. Tiga jam setelah anestesi, peningkatan tajam dalam jumlah leukosit dicatat, dan hanya pada hari ketujuh indikator ini pulih ke tingkat awal (Gbr. 1, 2).

Perubahan leukogram terutama berkaitan dengan jumlah neutrofil dan limfosit yang tersegmentasi.

10 menit setelah pemberian rometar intramuskular, kecenderungan peningkatan persentase neutrofil tersegmentasi muncul, yang bertahan selama tiga jam bahkan setelah menghirup eter. Perubahan jumlah limfosit mirip dengan perubahan neutrofil tersegmentasi, tetapi dengan tanda yang berlawanan (Gbr. 3, 4).

Pada komposisi biokimia serum darah terjadi penurunan aktivitas glukosa, ALT dan AST, peningkatan konsentrasi bilirubin total, ureum, kreatinin dan protein total. Hampir semua indikator mencapai level awal setelah 14 hari (Tabel 2).

Setelah pengenalan rometar, ada penurunan denyut jantung, pemanjangan periode sistolik dan diastolik dan penurunan yang signifikan dalam amplitudo gelombang R. Menghirup eter menyebabkan penurunan durasi interval Q-T dan R-R , deformasi gelombang P yang mendahului tidak setiap kompleks QRS, peningkatan amplitudo gelombang T, yang menjadi negatif, penurunan amplitudo gelombang R.

Setelah 24 jam, parameter elektrokardiogram praktis tidak berbeda dari yang awal.

3.2.2. Efek zoletil pada tubuh kelinci

Saat mempelajari indikator yang mencirikan status klinis kelinci percobaan dari subkelompok kedua dari kelompok pertama, penurunan suhu tubuh, penurunan denyut jantung dan gerakan pernapasan, yang dapat dilacak dalam waktu 3 jam setelah pemberian obat dan mencapai tingkat awal setelah 1 hari, telah ditetapkan.

Setelah pemberian Zoletil intravena, penurunan jumlah eritrosit dan kandungan hemoglobinnya diamati. Sehari kemudian, indikator-indikator ini praktis tidak berbeda dengan data yang diperoleh sebelum pemberian obat. Perubahan ini disertai dengan peningkatan jumlah leukosit, yang bertahan selama tiga hari (Gbr. 1, 2).

Dalam leukogram, peningkatan persentase neutrofil tusukan dicatat sudah satu jam setelah pengenalan hewan ke dalam anestesi dan tetap pada tingkat ini selama tiga hari. Satu jam setelah dimulainya anestesi, jumlah neutrofil tersegmentasi meningkat, yang, seperti pada hewan dari subkelompok sebelumnya, menyebabkan penurunan jumlah limfosit dan, sebaliknya, pada saat penelitian yang sama (Gbr. 3 , 4).

Dalam tiga hari setelah pemberian Zoletil intravena, penurunan kadar glukosa dan peningkatan jumlah protein total dalam serum darah diamati.

10 menit setelah pemberian Zoletil, ada sedikit penurunan denyut jantung, penurunan amplitudo gelombang S dalam beberapa siklus. Satu jam kemudian, dalam siklus terpisah, ekstrasistol dicatat, peningkatan amplitudo gelombang P dan R, dan gelombang T menjadi negatif. Durasi interval R-R dan Q-T meningkat.

Sehari kemudian, nilai elektrokardiogram mendekati nilai awal.

3.2.3. Pengaruh rometar dan zoletil pada tubuh kelinci

Setelah pengenalan Zoletil dengan latar belakang sedasi dengan rometar pada kelinci, penurunan suhu tubuh dimulai, dan setelah tiga jam mencapai tingkat minimum (35,2±0,36C).

Perlambatan denyut nadi yang diamati setelah pemberian rometar digantikan oleh normalisasi jangka pendek setelah pemberian zoletil, setelah itu bradikardia diamati lagi. Perubahan yang dijelaskan disertai dengan penurunan pernapasan. Sehari kemudian, nilai-nilai indikator ini praktis tidak berbeda dari yang pra-eksperimental.

Kecenderungan penurunan jumlah eritrosit dan kandungan hemoglobinnya diamati dalam waktu satu jam setelah pemberian zoletil dan digantikan oleh pemulihan cepat dalam jumlah eritrosit, yang setelah tiga jam tidak berbeda secara signifikan dari data yang diperoleh sebelumnya. pemberian rometar dan zoletil (Gbr. 1).

Pada gambar darah putih, perubahannya mirip dengan kelinci dari subkelompok pertama dari kelompok ini, tetapi dengan tingkat keparahan yang lebih rendah.

Jumlah leukosit meningkat 10 menit setelah premedikasi, dan setelah pemberian Zoletil-50, menurun dalam 30 menit. Tiga jam kemudian, terjadi peningkatan kandungan leukosit yang digantikan oleh penurunan dan mencapai nilai minimum pada hari ketiga, kemudian ada kecenderungan untuk meningkat (Gbr. 2).

Perubahan leukogram mirip dengan hewan dari subkelompok kedua, tetapi kurang jelas. 10 menit setelah penerapan Zoletil-50, neutrofil muda muncul dalam darah, yang pada waktu lain penelitian tidak ditemukan dalam darah tepi kelinci dari subkelompok ini. Persentase bentuk tusukan neutrofil menurun 10 menit setelah premedikasi. 10 menit setelah mencapai tahap anestesi bedah, peningkatan persentase neutrofil tusukan dicatat, yang berlangsung selama 24 jam dan hanya pada hari ketujuh jumlah mereka mendekati yang awal.

Jumlah neutrofil tersegmentasi 10 menit setelah injeksi

Gambar 1 - Perubahan jumlah eritrosit pada Gambar 2 - Perubahan jumlah leukosit pada

kelinci kelompok kedua, 1012/l kelinci kelompok kedua, 109/l


Gambar 3 - Persentase perubahan Gambar 4 - Persentase perubahan

neutrofil tersegmentasi pada kelinci limfosit pada kelinci dari kelompok kedua

kelompok kedua

Tabel 2 - Perubahan parameter biokimia serum darah kelinci

nomor subgrup Tanggal penelitian Glukosa, mmol/l Urea, mmol/l Bilirubin, mol/l Al AT, E/l Ac AT, E/l Protein total, g/l Kreatinin, mol/l
1 Sebelum pemberian obat 6.15±0.86 4,95 ± 1,09 2.06±0.61 55.6±2.88 16,2±3,96 64.31±3.29 122.8±8.35
1 hari 3.69±0.51* 9,41 ± 1,88* 2.84±1.00 41.6±7.02* 13,2 ± 2,77 73.02±5.21* 204.6±13.72*
3 malam 3.07±0.86* 8.08±1.55* 3,87±0,72* 49.0±5.43 16,2 ± 6,22 72.98±5.24* 218,8±15,04*
7 malam 3.62±0.63* 6.37±1.42 7.23±1.84* 51,0 ± 5,52 16,8 ± 5,59 70.14±2.64* 169,6±8,88*
14 hari 6.18±0.70 4.98±0.88 2.13±0.55 55,2 ± 2,77 16,2±3,63 64.28±3.42 123.6±5.94
2 Sebelum pemberian obat 6.47±0.67 4.73±0.54 2.22±0.77 49,6±3,05 15.2±3.96 63.5±6.34 117,4±10,95
1 hari 3.13±0.47* 2.82±0.43* 3,99±0,63* 64,6±7,86* 11,8±3,7 73.3±9.31 140,86±9,65*
3 malam 1,99±0,10* 4.95±0.78 0,83±0,44* 49.8±6.87 60.8±16.02* 81,03±8,8* 65,8±4,87*
7 malam 3,18±0,31* 5,31±0,59 2,5±0,84 50.4±4.34 46,4±10,88* 77.04±8.46* 104.00±11.60
14 hari 6.44±0.59 4.76±0.47 2.21±0.71 50.00 ± 2.35 15,60 ± 3,36 63.3±4.9 117,8±9,65
3 Sebelum pemberian obat 5,44±0,66 7.08 ± 2.45 2.71 ± 1.29 57,6±11,74 14.2±2.28 59,54±2,18 110.0±23.8
1 hari 3,31±0,32* 4.88±0.77 3,35 ± 1,51 25.00±12.88* 35,6±6,19* 71,89±6,00* 171,6±25,60*
3 malam 3.44±1.22* 5,97±2,52 2.68±1.17 44.00±16.72 17,8 ± 2,59 68,45±5,01* 155.00±35.04
7 malam 4.75 ± 1.17 8.80 ± 1.11 4.61±2.39 50.6±15.22 14.6±3.36 76,51±2,11* 141,2±20,71
14 hari 5,46±0,74 7.14 ± 2.39 2.69±1.18 57,8±11,39 14.2 ± 2.39 59,74±3,15 116.8±19.92

Kebiri merupakan solusi dari masalah kesuburan kelinci. Siapa yang tidak tahu ungkapan umum "berkembang biak seperti kelinci"! Hewan ini praktis menjadi simbol kesuburan, yang tentu saja tidak boleh dilupakan oleh pemilik hewan bertelinga hias, yang memiliki versi hewan peliharaan dekoratif.

Untuk menghindari banyak efek samping, para ahli merekomendasikan sterilisasi tepat waktu atau pengebirian mereka. Apa yang mengancam ini atau, sebaliknya, tidak mengancam kelinci dan haruskah itu dilakukan?

Operasi ini dapat dilakukan pada wanita dan pria. Dalam kasus pertama, kelinci diikat saluran tuba, secara artifisial menciptakan penghalang mereka, dan untuk kelinci "jantan" - saluran mani, atau sebagian dari mereka dihilangkan.

Artinya, pada umumnya gangguan kasar pada tubuh kelinci tidak terjadi: alat kelamin tidak dihilangkan, mereka bekerja, seperti yang mereka katakan, dalam mode normal, terus memproduksi hormon. Naluri seksual pada individu tidak terganggu, tidak berkurang, mampu kawin. Tetapi tujuan dari prosedur itu sendiri - untuk mencegah kelinci berkembang biak secara tidak terkendali - telah tercapai.

Setelah sterilisasi, hewan peliharaan dapat kehilangan berat badan atau menjadi agresif. Bisakah sterilisasi mempengaruhi tubuh kelinci? Karena kebutuhan alami untuk prokreasi, dan bahkan dengan sistem reproduksi yang berfungsi normal, kelinci yang dimandulkan mengalami gangguan hormonal utama.

Tubuh hewan terkena stres, yang dapat mengakibatkan masalah kesehatan yang serius, khususnya masalah dengan sistem genitourinari. Hewan peliharaan yang malang dapat, seolah-olah, menurunkan berat badan tanpa alasan yang jelas, menolak makan, unsur-unsur agresi muncul dalam perilakunya bahkan dalam kaitannya dengan pemiliknya.

Kebiri: pro dan kontra

Kebiri adalah operasi untuk menghilangkan seluruh organ reproduksi, itu. sebagai akibatnya, kelinci kehilangan indung telurnya (kebiri sebagian) atau mereka bersama dengan rahim (lengkap), dan kedua testis dikeluarkan dari jantan.

Jika sterilisasi hanya menghilangkan fungsi reproduksi dengan semua konsekuensi hormonal berikutnya, maka Pengebirian masalah hormonal pada tubuh kelinci tidak membuat.

minus

Harus diakui bahwa intervensi bedah semacam itu, dengan banyak keuntungan, yang akan kita bahas di bawah, juga memiliki beberapa momen yang tidak menyenangkan:

  • seperti operasi apa pun, itu adalah trauma dan stres(baik untuk hewan peliharaan dan untuk pemiliknya);
  • pengeluaran uang tunai;
  • perhatian ekstra.

pro

Meskipun beberapa "melawan", para ahli, menjawab pertanyaan "apakah perlu mengebiri kelinci hias?", Klaim bahwa untuk laki-laki bertelinga dari kedua jenis kelamin, pengebirian adalah pilihan terbaik. Untuk - banyak argumen:

Pada usia berapa?

Sering terjadi bahwa pengebirian harus dilakukan pada bulu yang sudah setengah baya karena alasan kesehatan. Namun, dokter hewan percaya bahwa yang terbaik adalah melakukannya saat kelinci masih muda, sehat, dan energik.

Sterilisasi harus dilakukan ketika hewan peliharaan berusia enam bulan. Kelinci mencapai kematangan seksual pada usia sekitar 4 bulan, dan pada prinsipnya operasi sudah dimungkinkan. Namun, usia 6 bulan dianggap lebih aman.

Indikator untuk pria adalah turunnya testis ke dalam skrotum. Ini juga terjadi pada usia yang hampir sama - 3,5-4 bulan.

Tidak ada gunanya melakukan operasi seperti itu sebelumnya: tidak hanya secara teknis lebih sulit, tetapi juga tidak dapat diprediksi untuk kesehatan kelinci.

"Dokter Aibolit" juga tidak akan mengebiri kelinci tua. Secara statistik, kemungkinan hasil operasi yang tidak berhasil meningkat seiring bertambahnya usia. Dan bahkan seorang pasien yang telah melewati batas usia dua tahun harus sudah menjalani pemeriksaan menyeluruh dengan tes.

Jika kelinci berusia lebih dari 4 tahun, maka kemungkinan kematiannya jauh lebih tinggi daripada rekannya yang berusia 6-9 bulan.

Kapan masih belum bisa?

Jika hewan peliharaan kelebihan berat badan, mereka tidak akan dikebiri sampai kembali normal.

Mereka akan melakukan hal yang sama di hadapan beberapa penyakit - pertama pasien berbulu harus disembuhkan.

Bagaimana operasinya?

Anestesi. Prosedur operasi untuk pria dan wanita berbeda. Pada kelinci, testis benar-benar diangkat. Ini dapat dilakukan dengan membuat satu atau dua sayatan.

Pada varian pertama, kedua testis diangkat melalui sayatan, pada varian kedua, sayatan dibuat di masing-masing testis, dan organ dikeluarkan secara terpisah. Semua ini dilakukan dengan anestesi lokal.

Sayatan yang dirawat dengan antiseptik mungkin tetap terbuka. Opsi "tertutup" melibatkan menjahit atau mengoleskan lem bedah.

Operasi pada wanita lebih rumit. Semua organ reproduksi dikeluarkan dari kelinci, dan intervensi semacam itu memerlukan penggunaan anestesi. Setelah pengangkatan, pembuluh darah yang memberi makan organ-organ ini juga dijahit, dan jahitan diterapkan untuk menutup sayatan.

Jika Anda khawatir tentang kualitas dan efek anestesi pada hewan peliharaan yang dioperasi, Anda perlu "memantau" klinik hewan terlebih dahulu, mempelajari ulasan pemilik yang mengalami masalah seperti itu, dan memilih spesialis yang sudah memiliki pengalaman luas dalam bidangnya. mengobati, termasuk bedah, kelinci hias.

Operasi: sebelum dan sesudah

Sebelum momen penting, Anda harus mengklarifikasi di klinik:

  • apa yang akan menjadi sasaran hewan peliharaan Anda - sterilisasi atau pengebirian;
  • tes apa yang perlu dilakukan tambahan;
  • obat atau perangkat apa yang mungkin diperlukan pada periode pascaoperasi;
  • cara mempersiapkan kelinci untuk operasi.

Anda tidak boleh memelihara hewan peliharaan Anda selama setengah hari dengan "diet kelaparan". Untuk hewan yang terus-menerus mengunyah, ini membuat stres. Anda hanya perlu mengurangi dosis biasa.

... Tapi sekarang semua manipulasi yang diperlukan untuk mencegah "ledakan populasi" kelinci telah selesai, dan sekarang periode penting akan datang - perawatan pasca operasi. Cara melakukannya, Anda tentu harus mencari tahu bahkan di klinik hewan.

Pastikan untuk bertanya kepada dokter perilaku apa yang bisa diharapkan dari kelinci yang dioperasi, agar tidak takut dengan "kelainan"; bagaimana seharusnya tempat sayatan dan jahitan pascaoperasi; bagaimana memprosesnya.

Anda harus siap untuk apa pada jam-jam pertama pascaoperasi, kelinci akan terhuyung-huyung, dan dia mungkin berperilaku sangat tidak biasa.

Itu harus ditempatkan di ruang hidup yang bersih dan memberikan kenyamanan, kedamaian dan minuman. Baki juga harus bersih dan diisi dengan pengisi baru (sebagai pilihan - dengan potongan kertas - bahan yang benar-benar netral).

Makanan dapat diberikan setelah beberapa jam, tetapi tidak boleh makan berlebihan setidaknya selama tiga hari pertama.

Bicaralah dengan dokter Anda tentang cara merawat hewan peliharaan Anda setelah operasi. Perhatikan nafsu makan hewan peliharaan Anda serta buang air kecil dan tinja. Jika Anda tiba-tiba menyadari bahwa dia tidak makan, bahwa dia sudah lama tidak buang air kecil, atau dia tidak buang air besar, atau, sebaliknya, diare terjadi, ini adalah alasan untuk menghubungi spesialis.

Situs yang dioperasikan harus diperiksa secara berkala. Jahitannya harus kering dan bersih. Seekor kelinci sering memiliki keinginan untuk menggerogoti jahitannya - perlu entah bagaimana mengamankannya, meskipun hewan peliharaan secara aktif menolak semua jenis perban dan kerah pelindung.

Jika jahitannya "terasa" normal, tidak perlu dirawat dengan apa pun. Tapi obat bius untuk kelinci, dan terutama kelinci, tidak akan sakit sama sekali. Rasa sakit dapat memperlambat pemulihan pasca operasi hewan, mengganggu nutrisi dan kebersihan pribadi.

Meskipun kelinci akan membutuhkan gerakan aktif di sekitar ruangan setelah beberapa hari, jangan biarkan untuk saat ini: tempat sayatan mungkin terluka dan terluka.

Jangan khawatir jika Anda melihat pembengkakan skrotum. Jika ini diamati tidak lebih dari dua minggu, maka itu dianggap sebagai norma.

Setelah pengebirian, kelinci tidak bisa diselesaikan dengan kelinci"Usia subur. Faktanya adalah bahwa pada pria yang dioperasi, sperma yang tersisa di vas deferens mempertahankan sifatnya untuk waktu yang lama, dan tingkat testosteron tidak langsung turun ke "nol", oleh karena itu kelinci akan mencoba kawin selama 3-4 minggu lagi, dan kelinci bisa hamil.

Masalah harga

Operasi sterilisasi atau pengebirian, tentu saja, adalah prosedur berbayar. Berapa biayanya bervariasi di kota yang berbeda dan bahkan di klinik yang berbeda. Di institusi veteriner swasta, harga biasanya lebih tinggi daripada di publik.

Mengebiri jantan lebih murah daripada betina. Ini mungkin juga tergantung pada jenis bertelinga. Seringkali sama atau melebihi harga "pasien". Biaya prosedur bedah yang sebenarnya mulai dari 2000 rubel. Kita harus menambahkan harga anestesi, bahan habis pakai, obat-obatan, droppers, serta studi tambahan - ultrasound, tes, eko dan elektrokardiogram. Ada kemungkinan bahwa Anda harus meninggalkan hewan peliharaan Anda di klinik untuk beberapa waktu.

Tidak boleh didiskon dan item-item pengeluaran seperti transportasi mudik, konsultasi pendahuluan dengan dokter hewan dan pemeriksaan akhir, serta pembelian alat pelindung diri (perban/kerah).

Jika Anda adalah pemilik yang bahagia dari beberapa kelinci hias, maka untuk menghindari masalah kelebihan populasi kelinci, Anda tentu harus memutuskan terlebih dahulu apa yang harus dilakukan dengan minat seksual hewan peliharaan Anda dan cara mana yang tampak lebih manusiawi untuk Anda - sterilisasi atau pengebirian, setelah mempelajari saran dan umpan balik dari para ahli dan kolega dengan hobi.

dalam kontak dengan

Mengapa kelinci dikebiri atau dimandulkan:
- Diyakini bahwa kelinci yang dikebiri dan dikebiri lebih sehat dan karenanya hidup lebih lama. Dengan mensterilkan kelinci, sebenarnya Anda menghilangkan risiko terkena kanker organ reproduksi betina. Laki-laki yang dikebiri, sebaliknya, akan hidup lebih lama dan menerima lebih sedikit cedera karena fakta bahwa ia berhenti mencoba berkelahi dengan hewan peliharaan lainnya (kelinci lain, kucing, dll.).
Kelinci yang dimandulkan dan dikebiri lebih ramah dan mudah bergaul. Mereka lebih tenang, lebih penyayang, mudah ditebak. Selain itu, kelinci membuat kerusakan jauh lebih sedikit di rumah (mereka lebih sedikit menggerogoti furnitur dan menggali lubang di karpet), agresi berkurang (berusaha menggigit, mencakar, menggeram pada pemiliknya, keluar dan melarikan diri). Setelah operasi mereka
-Berhenti memukul. Setelah pengebirian dan sterilisasi, kelinci, baik jantan maupun betina, berhenti menandai wilayahnya dan jauh lebih mudah belajar pergi ke toilet di satu tempat daripada sebelumnya.
Pengebirian dan sterilisasi kelinci adalah jenis kontribusi Anda untuk pengendalian kelahiran hewan. Lebih dari 15.000 hewan peliharaan yang luar biasa seperti kucing, kelinci, anjing mati setiap tahun di negara kita (dalam konteks ini, AS) karena kedinginan dan kelaparan, ditinggalkan oleh pemiliknya untuk nasib mereka. Banyak hewan mati karena dilepaskan ke taman hutan atau hanya ke jalan, di mana mereka kekurangan makanan dan mati karena penyakit, dan juga mangsa yang mudah bagi hewan lain dan atau mati berlari di seberang jalan. Sama sekali bukan fakta bahwa kelinci yang Anda serahkan ke toko hewan peliharaan akan menemukan kehidupan yang lebih baik. Karena mereka akan dijual sebagai komoditas kepada pembeli pertama yang datang dan tidak ada yang akan memeriksa untuk tujuan apa hewan itu dibeli. Banyak kelinci yang akan diberi makan ular atau dibelikan sebagai suguhan untuk anak yang akan segera bosan.
Dikebiri dan dikebiri jauh lebih puas dan main-main berhubungan dengan teman baru. Kelinci adalah hewan sosial dan dia senang berteman dengan kelinci lain. Namun sampai mereka dimandulkan, sayangnya mereka tidak dapat memperlakukan kelinci lain sebagai teman, karena pelecehan seksual (lawan jenis) atau agresi terhadap kelinci berjenis kelamin sama, yang disebabkan oleh hormon.
Spaying dan spaying kelinci aman(asalkan Anda menghubungi dokter hewan yang berpengalaman). Asosiasi Kelinci Domestik www.rabbit.org telah melihat jenis operasi ini lebih dari seribu kali. Kematian menyumbang sekitar 0,1% dari operasi tersebut, penyebab utamanya adalah anestesi. Dokter hewan kelinci yang berpengalaman akan melakukan operasi ini dengan sedikit atau tanpa risiko bagi kesehatan hewan peliharaan Anda. Jangan biarkan dokter hewan yang rendah atau tidak berpengalaman melakukan jenis operasi ini pada hewan peliharaan Anda.
Apakah operasi tersebut benar-benar aman untuk kelinci?
Operasi ini sama amannya untuk kelinci seperti halnya untuk hewan lain. Sayangnya, kebanyakan dokter hewan tidak mengetahui cara melakukan operasi yang aman pada kelinci. Jangan izinkan dokter hewan yang tidak berpengalaman atau dokter hewan yang belum pernah menangani kelinci untuk mengoperasi hewan peliharaan Anda. Anda juga perlu merawat kelinci dengan benar sebelum dan sesudah operasi.
Pada umur berapa kelinci boleh dioperasi?
Betina dapat dioperasi setelah pubertas pada usia 4 bulan, tetapi kebanyakan dokter hewan lebih suka menunggu sampai usia enam bulan, karena kelinci yang lebih muda mungkin mengalami lebih sedikit operasi tanpa pisau. Jantan dikebiri mulai usia 3,5 bulan segera setelah indung telur mereka turun, tetapi kebanyakan dokter hewan menyarankan untuk menunggu hingga lima bulan.
Pada usia berapa sudah terlambat untuk operasi ini?
Dokter hewan berpikir secara berbeda, tetapi mereka setuju pada satu hal: setelah usia enam tahun, anestesi dan operasi itu sendiri menjadi lebih berbahaya bagi kesehatan. Ide ini selalu tepat waktu, satu-satunya adalah, jika kelinci Anda berusia lebih dari dua tahun, ada baiknya melakukan pemeriksaan pendahuluan, terutama pada sistem kardiovaskular. Pemeriksaan ini mungkin menghabiskan biaya lebih banyak daripada operasi itu sendiri, tetapi mungkin mengungkapkan alasan mengapa operasi itu bisa lebih berbahaya bagi hewan peliharaan Anda. Pemeriksaan pendahuluan sangat penting untuk pemilihan anestesi.
Bagaimana cara menentukan apakah betina dimandulkan oleh pemilik sebelumnya atau peternak?
Ada kemungkinan besar bahwa betina tidak dimandulkan. Anda dapat mencukur perut bagian bawah dan melihat apakah ada bekas luka di sana. Namun, teknik modern memungkinkan dokter hewan untuk melakukan operasi tersebut tanpa jaringan parut. Ada kemungkinan dokter hewan akan menempelkan merek di perut, yang menunjukkan bahwa operasi telah dilakukan, tetapi ini tidak mungkin. Oleh karena itu, satu-satunya cara adalah memeriksa operasi yang satu ini lagi.
Pertanyaan apa yang harus saya tanyakan kepada dokter hewan di klinik hewan?
Berapa banyak pemilik kelinci yang menghubungi Anda per tahun?
Berapa banyak pengebirian/pengebirian yang dilakukan dokter hewan ini dalam setahun terakhir?
Berapa persentase transaksi yang berhasil? 90% dari operasi yang berhasil adalah persentase yang terlalu kecil untuk operasi semacam ini. Setiap dokter, dokter hewan atau manusia, kehilangan pasien secara tidak sengaja, biasanya karena penyakit atau penyakit yang tidak terdiagnosis. Dokter hewan di seluruh negeri (AS) yang mengebiri / mengebiri kelinci untuk House Rabbit Society kehilangan kurang dari 0,5% dari total jumlah hewan yang dioperasi. - Jika ada kematian, apa penyebabnya?
Apakah dokter mengangkat ovarium dan rahim? (dokter hewan harus mengeluarkan kedua organ tersebut)
Apakah dokter melakukan operasi kebiri "terbuka" atau "tertutup"? (Tutup lebih disukai - biarkan dokter Anda menjelaskan perbedaannya.)
Akankah bagian bedah (masuk) ke testis dilakukan melalui skrotum atau melalui perut? (Melewati rongga perut tidak perlu meningkatkan trauma kelinci jantan).
Apakah dokter hewan mengharuskan hewan untuk menahan diri dari makan dan minum sebelum operasi? (Yang terbaik adalah tidak melakukan ini - kelinci tidak dapat muntah, jadi ini tidak perlu ditakuti selama operasi, dan tidak boleh mengosongkan saluran pencernaan kelinci sepenuhnya).
Anestesi apa yang akan digunakan? (Banyak dokter hewan yang sangat sukses dalam melakukan operasi dengan menggunakan obat bius selain isofluran. Namun setelah itu, kelinci akan seperti mabuk (“hung over”), dan kemungkinan besar tidak akan bisa makan dalam waktu lama setelah operasi. , yang pada gilirannya akan menyebabkan masalah serius, jika Anda tidak merawatnya tepat waktu.
Diskusikan perawatan operasi dan pasca operasi dengan dokter hewan Anda. Cari tahu bagaimana masalah akan diidentifikasi, seberapa sering dokter hewan atau asistennya dapat mengunjungi bayi Anda? Apakah mereka akan melakukan sesuatu untuk mengidentifikasi kemungkinan masalah pascaoperasi? Perawatan seperti apa yang akan diberikan kepada hewan peliharaan Anda segera setelah operasi: oksigen, kehangatan, kedamaian (anjing menggonggong dan kucing mengeong di kandang tetangga bukanlah pilihan terbaik). Apa yang akan dilakukan para dokter untuk menghidupkan kembali kelinci itu?! Mengajukan pertanyaan! Ini akan menarik perhatian dokter hewan. Beri tahu dia bahwa Anda mengkhawatirkan kesehatan hewan peliharaan Anda dan akan memantau tindakannya dengan ketat.
Perawatan pra dan pasca operasi apa yang harus diberikan kepada kelinci?
Berikan acidophilus kelinci Anda beberapa hari sebelum operasi, hanya untuk memastikan sistem pencernaan kelinci baik-baik saja.
Jangan mengubah pola makannya dengan cara apa pun. Setelah operasi, berikan juga acidophilus sampai nafsu makan kembali normal.
Periksa jahitan setiap hari. Setelah pengebirian, skrotum dapat diisi dengan cairan. Kompres hangat akan berguna, tetapi jangan terlalu khawatir. Jika ada tanda-tanda infeksi, segera bawa kelinci ke dokter hewan.
Pisahkan betina yang dioperasikan dari jantan(dikebiri atau tidak tidak masalah) karena dia bisa terluka parah jika laki-laki mencoba menutupinya. Setelah operasi, pastikan itu tenang dan tenang agar kelinci tidak takut dan tidak panik, jangan memprovokasi putaran akrobatik, tetapi biarkan kelinci bergerak bebas di tempat yang layak huni - kelinci sendiri tahu apa yang akan sakit dia dan apa yang tidak.
Banyak dokter hewan meninggalkan kelinci di klinik semalaman. Jika dokter hewan mengizinkan Anda membawa pulang kelinci, maka Anda perlu mengetahui hal-hal berikut:
-Banyak pejantan yang pulang ke rumah setelah operasi berharap menemukan makan malam yang lezat, pastikan mereka memiliki pelet favorit, air, dan seikat jerami segar (alfa segar yang baik akan membantu kelinci mendapatkan kembali nafsu makannya).
-Banyak betina lebih suka dibiarkan sendiri, mereka tidak menunjukkan nafsu makan dan akan duduk diam di sudut jauh kandang atau di sudut rumah di mana mereka dapat yakin bahwa mereka tidak akan diganggu.
Pagi berikutnya atau sore hari setelah operasi, kelinci perlu makan sesuatu. Tidak masalah apa dan berapa banyak, karena dengan asupan makanan, saluran pencernaan akan terus bekerja. Jika kelinci masih tidak mau makan, maka sebagai upaya terakhir, siapkan campuran pelet kelinci (1 bagian pelet dan 2 bagian air, haluskan dengan blender, tambahkan acidophilus dan beri makan dalam porsi kecil melalui spuit (tanpa jarum). ) dari sisi mulut kelinci). Betina mungkin secara tidak sengaja melepas jahitannya. Jahit lagi lalu buat perban dengan melilitkan handuk meja di sekitar perutnya dan kencangkan dengan perban elastis. Pastikan kelinci bisa bernapas dengan bebas, tetapi perbannya terpasang kuat.

UDC 619:636.92:615.211

Obat suntik dan kombinasinya digunakan untuk anestesi kelinci

Obat suntik digunakan untuk memasukkan kelinci ke dalam anestesi selama berbagai prosedur diagnostik dan terapeutik. Penggunaannya dimungkinkan baik secara mandiri maupun sebelum obat inhalasi. Anestesi injeksi, tidak seperti inhalasi, tidak memerlukan peralatan khusus, oleh karena itu banyak dokter hewan terpaksa menggunakan metode ini. Saat ini, berbagai kombinasi obat untuk anestesi injeksi dan inhalasi lebih sering digunakan.

Akumulasi pengalaman menunjukkan bahwa banyak obat yang digunakan untuk sedasi, anestesi dan analgesia juga dapat digunakan untuk kelinci, tetapi dosis obat yang efektif dan aman, farmakodinamiknya, dan penggunaan kombinasi obat memiliki fitur yang signifikan. Beberapa persiapan dan kombinasinya, yang efeknya pada organisme kelinci telah dipelajari dan yang mungkin menarik bagi dokter hewan di negara kita, dijelaskan di bawah ini.

Acepromazin ( Acepromazine maleate) - turunan dari fenotiazin, memiliki efek depresi pada sistem saraf pusat. Ini adalah inhibitor dopamin, penghambat alfa-adrenergik dengan aktivitas antimuskarinik yang lemah. Utama saat menggunakan acepromazine dalam kedokteran hewan adalah efek penenangnya, yang tambahan termasuk efek antiaritmia dan efek antispasmodik. Hal ini biasanya digunakan untuk premedikasi pada hewan dari banyak spesies. Acepromazine memiliki efek hipotensi dan tidak memiliki aktivitas analgesik. Dosis untuk kelinci sebagai obat penenang 1 mg/kg IM, efeknya akan terjadi dalam 10 menit dan bertahan 1-2 jam . Ghaffari MS et al., (2009) menemukan bahwa acepromazine pada dosis normal mengurangi produksi air mata pada kelinci. . Pada kelinci, acepromazine dapat digunakan sebagai premedikasi sebelum anestesi gas. Ini dapat digunakan dalam kombinasi dengan butorphanol untuk sedasi yang lebih baik.

Xylazine(Xylazine) - adalah antagonis alfa 2-adrenergik, memiliki efek sedatif sedang dan analgesik kecil pada kelinci. Menyebabkan relaksasi otot rangka melalui aksi sentral. Sebelumnya, itu digunakan sebagai obat tunggal atau dalam kombinasi dengan ketamin. Kombinasi ini menyebabkan depresi pernapasan dan peredaran darah dan, pada dosis tinggi, aritmia jantung dan kematian yang tinggi pada kelinci. Atipamezole, penghambat alfa-adrenergik, dapat digunakan sebagai antagonis untuk menghentikan aksi xylazine.

medetomidine(Medetomidine (Domitor, Pfizer) adalah agonis alfa 2 yang lebih spesifik daripada xylazine dengan efek samping yang lebih sedikit. Secara signifikan lebih mahal dan membutuhkan dosis yang lebih tinggi pada kelinci daripada spesies hewan lain. Medetomidine dapat digunakan sebagai premedikasi atau dalam kombinasi dengan ketamin untuk anestesi bedah... Medetomidine menyebabkan penyempitan pembuluh perifer, mengubah suplai darah ke selaput lendir, sehingga dapat secara keliru ditentukan bahwa hewan tersebut memiliki sianosis.Ketika menggunakan medetomidine, hipoksia sering berkembang, sehingga seluruh periode anestesi membutuhkan penggunaan oksigen.

Vasokonstriksi yang diinduksi medetomidine dapat mengganggu oksimetri nadi dan pungsi vena untuk pengambilan sampel darah dan terapi cairan. Obat ini menyebabkan relaksasi laring yang baik, memfasilitasi intubasi endotrakeal. Itu tidak menyebabkan depresi pernapasan dan pemulihan biasanya terjadi dalam waktu tiga jam. Pemulihan dapat dipercepat dengan penggunaan atipamisole.

Butorfanol(Butorphanol) adalah antagonis reseptor opioid sintetik. Efek analgesik 3-5 kali lebih besar dari morfin pada manusia dan lebih dari 30 kali pada tikus. Pada kelinci, butorphanol menyebabkan analgesia dan sedasi ringan, tidak menyebabkan depresi pernafasan kecuali digunakan dalam dosis tinggi. . Dioleskan untuk meredakan nyeri pasca operasi dengan dosis 0,4 mg/kg per oral setiap 4-6 jam. Beberapa penelitian telah menunjukkan bahwa penggunaan butorphanol dosis tinggi menghasilkan efek analgesik yang lebih sedikit daripada dosis yang lebih rendah. Waktu paruh eliminasi butorfanol pada kelinci dengan dosis 0,5 mg/kg adalah 1,64 jam setelah pemberian intravena dan 3,16 jam setelah pemberian subkutan. Butorphanol dapat digunakan untuk membalikkan efek depresan pernapasan dari -agonis seperti fentanil, morfin dan pefidin. Butorphanol (0,05 mg/kg SC atau IM) digunakan dalam kombinasi dengan medetomidine dan ketamin untuk anestesi bedah. Ini juga dapat digunakan dalam kombinasi dengan acepromazine untuk sedasi . Kombinasi ini menyebabkan vasodilatasi, yang memfasilitasi pengambilan sampel darah dan injeksi intravena.

propofol(Propofol) adalah obat hipnotis short-acting yang tidak mirip dengan obat anestesi umum, mekanisme kerjanya tidak jelas. . Sebagai obat yang digunakan untuk induksi anestesi, ia memiliki banyak keuntungan termasuk efek hipnosis yang dalam dan luas terapi, onset kerja yang cepat dan pemulihan yang cepat. Dosis berulang tidak menumpuk dan propofol dapat digunakan untuk mempertahankan anestesi dengan infus kontinu. Baumgartner CM dkk. (2009) untuk tujuan ini digunakan propofol dengan dosis 4,0-8,0 mg/kg secara intravena, untuk mempertahankan anestesi 1,2-1,3 mg/kg/menit . Dosis 5-14 mg/kg memberikan waktu yang cukup bagi ahli anestesi berpengalaman untuk melakukan intubasi. Setelah pemberian, apnea jangka pendek mungkin terjadi, dan bila digunakan dosis tinggi, henti napas mungkin terjadi.

Studi oleh Dikmen B. et al. (2010) menunjukkan bahwa penggunaan propofol lebih disukai daripada ketamin pada hewan dengan insufisiensi ginjal. . ZhuT dkk. (2008) menemukan bahwa propofol meningkatkan aliran darah hepatik . Menurut Fudickar A. et al. (2009) pemberian propofol menyebabkan konsekuensi negatif seperti bradikardia akut, asistol, hiperlipemia dan asidosis metabolik, rhabdomyolysis dan mioglobinuria, yang digambarkan sebagai sindrom infus Propofol (PRIS). Propofol tidak dianjurkan untuk anestesi jangka panjang pada kelinci. Dalam percobaan Chen WH et al. (2006) propofol memiliki efek langsung pada jantung kelinci, menyebabkan penurunan tajam pada tekanan darah dan bradikardia.

Ketamin(Ketamin) adalah obat disosiatif yang digunakan sebagai satu-satunya obat untuk induksi anestesi atau dalam kombinasi dengan obat lain untuk induksi dan pemeliharaan anestesi. Ketamin memiliki efek simpatomimetik yang meningkatkan denyut jantung, curah jantung, dan tekanan darah. Pemberian ketamin intramuskular dengan dosis 40 mg/kg setelah 6,0 +/- 0,5 menit menyebabkan anestesi pada kelinci selama 36,0 +/- 0,9 menit. Pemberian vitamin C intramuskular awal pada dosis 30, 60 dan 240 mg/kg mengurangi waktu induksi ke dalam anestesi dan anestesi yang berkepanjangan menjadi 5,0 +/- 0,06 dan 37,0 +/- 0,7; 4.0 +/- 0,5 dan 39,0 +/- 0,6; 2.0 +/- 2.3 dan 44.0 +/- 0.8 menit masing-masing .

Penelitian telah menunjukkan bahwa penggunaan ketamin dengan dosis 10 mg/kg secara intravena pada kelinci dengan cedera tulang belakang melindunginya dari iskemia dan mencegah penurunan kadar antioksidan. .

Ketamin tidak menghilangkan refleks okular, laring, dan menelan. Relaksasi otot yang buruk membuat ketamin tidak cocok untuk digunakan sebagai agen tunggal anestesi sebelum operasi, digunakan dalam kombinasi dengan xylazine atau obat lain. Kombinasi ketamin/diazepam dan ketamin/acepromazin meningkatkan tekanan intraokular pada kelinci.

Tiletamine/zolazepam(tiletamine / zolazepame) - tiletamine - anestesi suntik, secara kimiawi mirip dengan ketamin, zolazepam - obat penenang diazepin yang lemah. Tindakan farmakologis dari obat gabungan mirip dengan ketamin dan diazepam. Kesesuaian tiletamine/zolazepam untuk anestesi kelinci dipelajari oleh Brammer DW et al. (1991). Pemberian intramuskular 32 dan 64 mg/kg obat tidak menyebabkan anestesi dan menyebabkan efek nefrotoksik dengan perkembangan gagal ginjal dalam 5 hari. Para peneliti menyimpulkan bahwa obat ini dikontraindikasikan pada kelinci. . Nefrotoksisitas tiletamine/zolazepam pada kelinci juga ditemukan dalam studi Doerning BJ. dkk. (1992). Kegagalan tiletamine/zolazepam untuk menginduksi anestesi pada kelinci adalah dari Dupras J. et al. (2001) . Pada saat yang sama, perlu untuk mempertimbangkan ketidakmungkinan penggunaan legal dari banyak obat yang digunakan di seluruh dunia di negara kita. Jika klinik hewan tidak dilengkapi untuk menggunakan anestesi inhalasi dan tidak memiliki izin untuk menggunakan ketamin, tiletamine/zolazepam adalah salah satu dari sedikit obat pilihan dan harus dikombinasikan dengan obat lain.

Ketamin dan xylazine.

Untuk prosedur invasif minimal yang berlangsung tidak lebih dari 30-40 menit, ketamin dengan dosis 35 mg/kg dicampur dengan xylazine 5 mg/kg diberikan secara intramuskular atau subkutan. . Setelah dibius, kelinci dapat diintubasi dan, jika perlu, dihubungkan ke ventilator. Pemeliharaan anestesi hingga 3 jam disediakan dengan pemberian intravena campuran ketamin / xylazine (10 + 2 mg / kg).

Ketamin, xylazine dan acepromazine.

Hobbs BA. dkk. (1991) menemukan bahwa kombinasi ketamin/xylazine dengan acepromazine lebih disukai jika diperlukan operasi yang lama, dalam penelitian mereka periode anestesi adalah 60-120 menit. Tetapi kombinasi ini, yang diberikan secara intramuskular, menyebabkan peradangan perineural dan fibrosis pada 4 dari 6 kelinci dalam penelitian tahun 1999 oleh Vachon P. .

medetomidine dan ketamin.

Campuran medetomidine / ketamine dengan dosis 0,35 mg / kg + 5 mg / kg intravena memberikan anestesi bedah setidaknya selama 35 menit. Pemberian atipamezole intravena menghentikan aksi obat ini. Studi pada kelinci (Kim MS et al. 2004) telah menunjukkan bahwa dosis atipamisole yang sama atau ganda optimal untuk pembalikan anestesi. .

Ketamin, medetomidine, dan isofluran.

Ketamin dengan dosis 15 mg/kg dan medetomidine 0,25-0,5 mg/kg secara subkutan atau intramuskular dalam kombinasi dengan isofluran 1,5-2,0% memberikan tingkat anestesi yang cukup untuk orkiektomi dan ovariektomi. Injeksi subkutan lebih mudah ditoleransi, tetapi setelah injeksi intramuskular, induksi ke dalam anestesi lebih cepat. Atipamezole adalah antagonis yang efektif, dengan dosis 0,5-1,0 mg / kg, ia bertindak lebih cepat ketika diberikan secara intramuskular dibandingkan dengan subkutan, mempercepat pemulihan kelinci.

Ketamin dan xylazine dengan butorphanol.

Dalam sebuah studi oleh Marini RP et al. (1992) ketamin/xylazine dengan dosis 35 mg/kg + 5 mg/kg digunakan bersama dengan butorfanol 0,1 mg/kg. Dimasukkannya butorphanol dalam kombinasi ini memperpanjang anestesi 1,4-1,6 kali dari 77 menjadi 99 menit. .

Medetomidine, ketamine dan butorphanol dengan isoflurane.

Kombinasi medetomidine, ketamine, dan butorphanol digunakan untuk prosedur singkat seperti memotong gigi seri atau rontgen. Ini juga dapat digunakan untuk menginduksi anestesi sebelum penggunaan anestesi inhalasi untuk prosedur yang lebih lama seperti gigi geraham, pencabutan gigi seri, dalam kasus ini intubasi diperlukan karena penggunaan masker wajah tidak memungkinkan. Kami juga merekomendasikan anestesi inhalasi saat mencuci saluran lakrimal.

Medetomidine dengan dosis 0,2 mg/kg dalam kombinasi dengan 10 mg/kg ketamin dan 0,5 mg/kg butorfanol diberikan secara subkutan. Ini berjumlah 0,2 ml/kg Domitor (Pfizer), 0,1 ml/kg ketamin dan 0,05 ml/kg Torbugesic (Fort Dodge). Suntikan biasanya menyakitkan, efek obat dimulai setelah 5-10 menit dan berlangsung sekitar 20 menit. Pemulihan penuh terjadi dalam 2-4 jam.

Pada akhir operasi, efek medetomidine dapat dihilangkan dengan atipamezole 1 mg/kg (0,1 ml/kg) (Antisedan (Pfizer). Masa kerja atipamezole adalah 15-40 menit. Efek analgesik medetomidine adalah juga dihilangkan dengan atipamezole. anestesi terjadi setelah 1-2 jam.

Tiletamine/zolazepam dan xylazine.

Dupras J. dkk. (2001) mempelajari kemungkinan penggunaan kombinasi tiletamine/zolazepam dengan dosis 20 mg/kg dalam kombinasi dengan xylazine 3 mg/kg. bila diberikan secara intramuskular. Pengenalan anestesi berlangsung sekitar 3 menit, durasi anestesi rata-rata 109,4 menit. Sehubungan dengan kemampuan xylazine untuk menyebabkan hipoksia yang signifikan, para peneliti menunjuk pada pemberian oksigen wajib kepada kelinci.

Razina A.V. et al (2010) merekomendasikan pemberian rometar intramuskular dengan dosis 4,0-6,0 mg/kg, diikuti (setelah 20 menit) dengan pemberian tiletamine/zolazepam intramuskular dengan dosis 5-10 mg/kg. Setelah 5 menit. Setelah injeksi zoletil intramuskular, relaksasi otot lengkap terjadi, refleks kornea dan sensitivitas nyeri tidak ada, pupil melebar. Anestesi berlangsung sekitar 30 menit, setelah 1,5 jam kelinci bergerak secara mandiri.

Meja - Obat-obatan dan kombinasinya direkomendasikan untuk sedasi dan anestesi kelinci

persiapan

Dosis (mg/kg)

Tindakan

Modus aplikasi

Durasi aksi

acepromazin

sedasi, tidak menyebabkan analgesia

acepromazin + butorfanol

sedasi dan analgesia

butorphanol + medetomidine + ketamin

anestesi

20-30 menit, pemulihan 1-4 jam

ketamin +

xylazine

anestesi

30-40 menit, pemulihan 1-2 jam

ketamin +

xylazine +

butorfanol

anestesi

40-60 menit

pemulihan 1-2 jam

ketamin +

xylazine +

acepromazin

anestesi

25-40 menit, pemulihan 1-2 jam

ketamin +

acepromazin

anestesi

ketamin +

medetomidine

anestesi

minimal 35 menit

propofol

hipnotis

untuk mempertahankan anestesi 1,2-1,3 mg / kg / mnt

acepromazin + butorfanol +

propofol

sedasi dan analgesia

untuk mempertahankan anestesi propofol 1,2-1,3 mg / kg / menit

tiletamine/zolazepam + xylazine

anestesi

xylazine +

tiletamine/zolazepam

anestesi

30 menit, pemulihan 1,5 jam

Jadi, obat-obatan yang ada saat ini dan kemungkinan penggunaannya dalam berbagai kombinasi memungkinkan, dalam banyak kasus, untuk memilih metode anestesi sesuai dengan kondisi kelinci, sifat dan durasi operasi yang direncanakan. Dalam hal ini, peralatan klinik hewan dan pengalaman dokter memainkan peran penting.

Kandidat Ilmu Kedokteran Hewan, Associate Professor Departemen Penyakit Burung, Ikan, Lebah dan Bulu Hewan, Akademi Kedokteran Hewan Negeri St. Petersburg, Pusat Kedokteran Hewan Vetus.

literatur

Plumb, Donald K. Sediaan farmakologi dalam kedokteran hewan // M., 2002.- 856 hal.

Razina A.V. Optimalisasi metode anestesi umum pada kelinci / A.V. Razina, A.I. Frolova, M.A. Sergeeva // Masalah topikal biologi veteriner. - 2005. - No. 1 (5). - Hal. 32-35

Baumgartner CM, Koenighaus H, Ebner JK, Henke J, Schuster T, Erhardt WD. Efek kardiovaskular dari fentanil dan propofol pada fungsi hemodinamik pada kelinci // Am J Vet Res. 2009 Mar;70(3):409-17.

Brammer DW, Doerning BJ, Chrisp CE, Rush HG. Efek anestesi dan nefrotoksik Telazol pada kelinci putih Selandia Baru // Lab Anim Sci. 1991 Okt;41(5):432-5.

Cooper, J.E. Anestesi spesies eksotis. Dalam Manual of Anesthesia for Small Animal Practice // (A.D.R. Hilbery, ed.). Asosiasi Dokter Hewan Kecil Inggris. 1989. - 144 rubel.

Chang C, Uchiyama A, Ma L, Mashimo T, Fujino Y. Perbandingan efek pada respons karbon dioksida pernapasan, tekanan darah arteri, dan detak jantung dexmedetomidine, propofol, dan midazolam pada kelinci yang dibius sevofluran // Anesth Analg. 2009 Juli;109(1):84-9.

Chen WH, Lee CY, Hung KC, Yeh FC, Tseng CC, Shiau JM. Efek jantung langsung propofol pada jantung kelinci terisolasi utuh // Acta Anaesthesiol Taiwan. 2006 Mar;44(1):19-23.

Cruz FS, CarregaroAB, Raiser AG, Zimmerman M. Anestesi intravena total dengan propofol dan S(+)-ketamin pada kelinci // Dokter Hewan Anaesth Analg. 2010 Mar;37(2):116-22.

Dikmen B, Yagmurdur H, Akgul T, Astarci M, Ustun H, Germiyanoglu C. Efek pencegahan propofol dan ketamine pada cedera ginjal pada obstruksi ureter unilateral // J Anesth. 2010 Februari;24(1):73-80.

Doerning BJ, Brammer DW, Chrisp CE dkk: Nefrotoksisitas Tiletamine di Selandia Baru Kelinci putih // Lab Anim Sci, 1992; 42(3):267-269.

Dupras J, Vachon P, Cuvelliez S, Blais D. Anestesi kelinci Selandia Baru menggunakan kombinasi tiletamine-zolazepam dan ketamine-midazolam dengan atau tanpa xylazine // Can Vet J. 2001 Jun;42(6):455- 60.

Elsa A, Ubandawaki S. Anestesi ketamin setelah premedikasi kelinci dengan vitamin C // J Vet Sci. 2005 Sep;6(3):239-41.

Flecknell, P.A. Menghilangkan rasa sakit pada hewan laboratorium // Lab Anim., 1984; 18, 147-160.

Flecknell, P.A. Anestesi // Dalam Manual Kedokteran dan Bedah Kelinci. 2000; (P.A. Flecknell, ed.) hlm. 103-116.

Flecknell, P.A., John, M., Mitchell, M. et al. Neuroleptanalgesia pada kelinci // Lab Anim., 1983; 17, 104-109.

Fudickar A, Bein B. Sindrom infus propofol: pembaruan manifestasi klinis dan patofisiologi // Minerva Anestesiol. 2009 Mei;75(5):339-44.).

Ghaffari MS, Moghaddassi AP, Bokaie S. Pengaruh acepromazine dan diazepam intramuskular pada produksi air mata pada kelinci // Vet Rec. 2009 31 Januari;164(5):147-8.

Ghaffari MS, Moghaddassi AP. Efek kombinasi ketamin-diazepam dan ketamin-acepromazin pada tekanan intraokular pada kelinci // Dokter Hewan Anaesth Analg. 2010 Mei;37(3):269-72.

Hellebrekers, L.J., de Boer, E.J., van Zuylen, M.A., Vosmeer H. Perbandingan antara anestesi medetomidine-ketamine dan medetomidine-propofol pada kelinci // Lab Anim., 1997; 31, 58-69.

Hobbs BA, Rolhall TG, Sprenkel TL, Anthony KL. Perbandingan beberapa kombinasi untuk anestesi pada kelinci // Am J Vet Res. 1991 Mei;52(5):669-74.

Kim MS, Jeong SM, Park JH, Nam TC, Seo KM. Pembalikan anestesi kombinasi medetomidine-ketamin pada kelinci oleh atipamezole // Exp Anim. 2004 Okt;53(5):423-8.

Marini RP, Avison DL, Corning BF, Lipman NS. Ketamine/xylazine/butorphanol: kombinasi anestesi baru untuk kelinci // Lab Anim Sci. Februari 1992;42(1):57-62.

Martinez MA, Murison PJ, Love E. Induksi anestesi dengan midazolam atau propofol pada kelinci yang diberi premedikasi dengan fentanyl/fluanisone // Vet Rec. 2009 27 Juni;164(26):803-6.

Mason D.E. Anestesi, analgesia, dan sedasi untuk mamalia kecil // Dalam Ferrets, Rabbit and Rodents, Clinical Medicine and Surgery. (E.V. Hillyer, K.E. Quesenberry, eds). 1997. - hlm. 378-391.

Murphi KL, Roughan JV, Baxter MG, Flecknell PA. Anestesi dengan kombinasi ketamin dan medetomidine pada kelinci: efek premedikasi dengan buprenorfin // Dokter Hewan Anaesth Analg. 2010 Mei;37(3):222-9. Epub 2010 10 Maret.

Ohya M, Taguchi H, Mima M, Koumoto K, Fukae T, Uchida M. Efek morfin, buprenorfin dan butorfanol pada dinamika saluran napas kelinci // Masui. 1993 Apr;42(4):498-503.

Orr HE, Roughan JV, Flecknell PA. Penilaian anestesi ketamin dan medetomidine pada kelinci domestik // Vet Anaesth Analg. 2005 Sep;32(5):271-9.

Portnoy, L.G., Hustead, D.R. Farmakokinetik butorphanol tartrat pada kelinci // Am J Vet Res., 1992; 53, 541.

Stephen J. Birchard, Robert G. Sherding - Saunders Manual of Small Animal Practice, Edisi Ketiga, 2005.- 2008 hlm.

Vachon P. Mutilasi diri pada kelinci setelah injeksi ketamin-xylazine-acepromazine intramuskular // Can Vet J. 1999 Agustus;40(8):581-2.

Wixson, S.K. Anestesi dan analgesia. Dalam The Biology of the Laboratory Rabbit, Academic Press, 2nd edn. 1994 (P.J. Manning dan D.H. Ringler, eds). hal 87-109.

Yershov AL, Jordan BS, Fudge JM, Dubick MA. Pengaruh mode ventilasi pada kebutuhan ketamin/xylazine pada kelinci // Vet Anaesth Analg. 2007 Mei;34(3):157-63.

Yu QJ, Zhou QS, Huang HB, Wang YL, Tian SF, Duan DM. Efek perlindungan ketamin pada cedera tulang belakang iskemik pada kelinci // Ann Vasc Surg. 2008 Mei-Jun;22(3):432-9.

Zhu T, Pang Q, McCluskey SA, Luo C. Pengaruh propofol pada aliran darah hati dan keseimbangan oksigen pada kelinci // Can J Anaesth. 2008 Juni;55(6):364-70.

Memuat...Memuat...