Melentiev Oleg Nikolaevich, candidato alle scienze veterinarie, veterinario presso il Vetus Center for Veterinary Medicine.

Nel periodo postoperatorio devono essere prese in considerazione anche le caratteristiche biologiche significative dei conigli, che li distinguono dagli altri animali domestici. Per il recupero dopo l'anestesia, il coniglio viene posto su una lettiera calda o in una gabbia riscaldata con un pavimento caldo (Fig. 1, 3), è necessaria una temperatura di circa 35 ° C. Non appena la temperatura corporea del coniglio si stabilizza e il coniglio può sedersi sulle sue zampe, il riscaldamento dovrebbe essere ridotto a 26-28°C, poiché i conigli in questo stato non possono respirare frequentemente e sono suscettibili all'ipertermia. L'assenza di irritanti esterni e le condizioni ambientali confortevoli facilitano il recupero dopo l'anestesia. Solo un coniglio completamente sveglio deve essere tenuto a temperatura ambiente.

Per la custodia, è meglio scegliere una stanza dove non ci sono altri animali e il loro odore è assente. Non appena il coniglio recupera abbastanza per mangiare e bere, è necessario fornirgli acqua e cibo. Subito dopo il risveglio e per tutto il periodo postoperatorio è preferibile somministrare fieno, erba, carote. Dopo aver estratto gli incisivi, è necessario dare al coniglio del cibo morbido, passato o grattugiato. Il fieno di buona qualità può essere utilizzato anche come lettiera per posizionare il coniglio sul petto (Figura 2).

Una buona tecnica operatoria, velocità dell'operazione e materiale di sutura appropriato riducono il disagio nell'area della ferita chirurgica, ma nella maggior parte dei casi è necessaria un'analgesia postoperatoria. Valutare il dolore nei conigli può essere difficile, poiché non mostrano molti dei segni di dolore che si trovano in altre specie e siedono tranquillamente vicino alla parte posteriore della gabbia, insensibili all'ambiente circostante. I conigli sono estremamente sensibili al dolore, soprattutto dopo un intervento chirurgico addominale e la rimozione degli incisivi. Dolore e stress stimolano il sistema nervoso simpatico e riducono la motilità gastrointestinale. Una diminuzione della motilità intestinale è un fattore scatenante per lo sviluppo di una cascata di processi avversi che portano alla lipidosi epatica e alla morte.

È possibile determinare la presenza di dolore osservando l'animale, ma ciò richiede una stretta comunicazione con lui prima dell'operazione e la conoscenza delle caratteristiche del suo comportamento. I parametri fisiologici come la temperatura corporea, la frequenza cardiaca e la respirazione cambiano sotto l'influenza del dolore, ma per determinare questi parametri è necessario tirare fuori il coniglio dalla gabbia, che di per sé può farli cambiare. I conigli che soffrono non si avvicinano alla parete anteriore della gabbia alla vista del cibo. Non si stanno toelettando e possono diventare aggressivi nei confronti di altri animali tenuti nella stessa gabbia. Il dolore nella cavità addominale può manifestarsi con l'adozione di una posizione piegata del corpo e il digrignamento dei denti. A volte i conigli si comportano in modo irrequieto, rimbalzando e girando periodicamente lungo il fondo della gabbia. La conseguenza del dolore è un completo rifiuto di nutrirsi.

L'analgesia negli animali da laboratorio, compresi i conigli, è stata ampiamente studiata. È stato sviluppato un sistema di punteggio del dolore per determinare l'efficacia degli analgesici, sebbene le differenze individuali possano influenzare la percezione del dolore, soprattutto di intensità moderata. Le dosi di farmaci necessarie per fornire l'analgesia dipendono dall'irritante, quindi è necessario monitorare il coniglio e determinare la sua risposta all'analgesia. Il dolore è una condizione pericolosa per la vita nel coniglio, quindi tutti i conigli che soffrono dovrebbero ricevere analgesia.

L'analgesia è "l'assenza di sensibilità al dolore o sollievo dal dolore senza perdita di coscienza". In risposta al dolore e ad altri fattori di stress, gli oppioidi endogeni vengono rilasciati e riducono la sensibilità al dolore. L'infiammazione o l'ipossia nel sito della lesione porta al rilascio di sostanze nocicettive come le chinine, che a loro volta stimolano la formazione di prostaglandine.

Gli analgesici oppioidi sono farmaci ad azione centrale utilizzati per il dolore intenso, che hanno un effetto specifico sul sistema nervoso centrale. Gli effetti farmacologici sono associati a un effetto sui recettori oppioidi del sistema nervoso centrale. Una varietà di recettori per gli oppioidi è stata trovata nel cervello, nel midollo spinale e in altri tessuti, compreso il tratto gastrointestinale. Gli oppioidi provocano un certo effetto a seconda del tipo di recettore e ci sono differenze di specie nella loro azione:

– I recettori µ-(mu) sono i principali responsabili di analgesia sopraspinale, euforia, depressione respiratoria e causano dipendenza fisica nell'uomo;
- i recettori k-(kappa) sono i principali responsabili dell'analgesia spinale, della miosi e della sedazione;
– I recettori σ- (sigma) sono responsabili della disforia (umore cupo, irritabile, irritabile con aumento dell'ansia in risposta a qualsiasi stimolo esterno), allucinazioni, eccitazione respiratoria e vari effetti vasomotori.

Altri recettori, come i recettori δ- (delta), si trovano in vari tessuti. Gli effetti sui recettori µ e k sono i più importanti per alleviare il dolore.
Altri interventi come depressione respiratoria, sedazione o effetti sulla motilità gastrointestinale possono essere utili o meno a seconda della situazione in cui vengono utilizzati questi farmaci.

Nei conigli, gli analgesici narcotici sono usati per fornire analgesia e, in alcuni casi, anestesia. Possono essere utilizzati anche dopo l'anestesia per prolungare l'effetto analgesico. D'altra parte, gli analgesici narcotici causano depressione respiratoria e mentale, ipotermia e bradicardia nei conigli.

La buprenorfina è un potente analgesico a lunga durata d'azione, agonista parziale degli oppioidi. Nei conigli viene utilizzato per l'analgesia a lungo termine per alleviare il dolore acuto o cronico agli organi interni alla dose di 0,02-0,05 mg/kg per via orale o intramuscolare ogni 6-12 ore; 0,5 mg/kg per via rettale ogni 12 ore. La buprenorfina viene anche utilizzata per prevenire gli effetti depressivi respiratori del fentanil dopo l'intervento chirurgico quando per l'anestesia viene utilizzata una combinazione di fentanil/fluanisone e benzodiazepine.

Il butorfanolo è un antagonista sintetico del recettore degli oppioidi. Nei conigli, il butorfanolo fornisce analgesia e blanda sedazione e non causa depressione respiratoria a meno che non vengano utilizzate dosi elevate. Applicato per alleviare il dolore postoperatorio alla dose di 0,4 mg/kg per via orale ogni 4-6 ore.

Gli studi hanno dimostrato che l'uso di dosi elevate di butorfanolo provoca un effetto analgesico minore rispetto a dosi inferiori. L'emivita di eliminazione del butorfanolo nei conigli alla dose di 0,5 mg/kg è di 1,64 ore dopo la somministrazione endovenosa e di 3,16 ore dopo la somministrazione sottocutanea. Il butorfanolo può essere utilizzato per invertire gli effetti depressivi sulla respirazione di µ-agonisti come fentanil, morfina e pefidina.

Il tramadolo è un analgesico oppioide derivato dal cicloesanolo. Agonista non selettivo dei recettori µ, δ e k nel SNC. È un racemato di (+) e (-) isomeri (50% ciascuno), che sono coinvolti negli effetti analgesici in vari modi. L'isomero (+) è un agonista del recettore oppioide puro, ha un basso tropismo e non ha una selettività pronunciata per vari sottotipi di recettori. L'isomero (-), inibendo l'assorbimento neuronale della noradrenalina, attiva le influenze noradrenergiche discendenti. A causa di ciò, la trasmissione degli impulsi del dolore alla sostanza gelatinosa del midollo spinale viene interrotta, causando un effetto sedativo. A dosi terapeutiche, praticamente non deprime la respirazione. Ha un effetto antitosse. Oltre l'80% del tramadolo viene escreto nei conigli attraverso i reni. Non ci sono stati effetti collaterali dopo la somministrazione orale di tramadolo alla dose di 11 mg/kg. L'emivita era di 145,4 +/- 81,0 minuti; la concentrazione massima nel plasma sanguigno è 135,3 +/- 89,1 ng / ml. La dose raccomandata per i conigli è di 2,0-4,0 mg/kg ogni 12 ore.

Fentanil/fluanisone (fentanil/fluanisone). Il fentanil è un potente agonista degli oppioidi che agisce prevalentemente sul recettore µ e provoca analgesia, depressione respiratoria e, nell'uomo, euforia. La forza dell'azione analgesica è 20-100 volte superiore alla morfina. Il suo effetto analgesico è potenziato dal fluanisone, che rimuove anche l'effetto depressivo sulla respirazione. Secondo molti autori, questo è il miglior farmaco utilizzato nei conigli per la sedazione e l'anestesia, l'analgesia profonda dura 3 ore dopo la somministrazione. La combinazione fentanil/fluanisone viene utilizzata per la premedicazione, la sedazione e l'analgesia forte o, in combinazione con midazolam, per l'anestesia.

In alcuni casi, i farmaci antinfiammatori non steroidei (FANS), che inibiscono la sintesi di ciclossigenasi, prostaglandine e sostanze simili, possono rappresentare un'alternativa agli analgesici oppioidi. La cicloossigenasi è un enzima che promuove la formazione di prostaglandine dall'acido arachidonico nelle membrane cellulari. Esistono due isomeri della cicloossigenasi: COX-1 e COX-2. Tutti i FANS hanno proprietà analgesiche, antipiretiche e antinfiammatorie. Il loro potenziale effetto tossico è associato agli isomeri della ciclossigenasi. La COX-1 ha una serie di proprietà fisiologiche e si ritiene che l'inibizione della COX-1 sia responsabile della maggior parte degli effetti tossici dei FANS. La COX-2 è prodotta nei siti di infiammazione dall'azione dei mediatori dell'infiammazione.
Il carprofene inibisce meno la ciclossigenasi ed è quindi meno tossico, ha un meccanismo d'azione diverso. La struttura della molecola influenza anche l'azione farmacologica, in particolare dei FANS appartenenti al sottogruppo dell'acido 2-arilproprionico (derivati ​​dell'acido propionico: carprofen, ketoprofen e vedaprofen). Alcune specie animali hanno metabolismo diverso. In generale, l'intervallo tra l'uso di FANS nei neonati e negli animali anziani dovrebbe essere più lungo per ridurre la tossicità.

La soppressione della normale regolazione da parte delle prostaglandine può portare a un'insufficiente perfusione renale nei pazienti ipotesi ea insufficienza renale acuta. Ciò accade durante l'anestesia, soprattutto se si verifica una significativa perdita di sangue, è necessario mantenere la pressione sanguigna introducendo la quantità richiesta di soluzioni. Si consiglia di fare una pausa di 24 ore tra l'uso di FANS di diverso tipo.
I FANS possono essere utilizzati per l'analgesia postoperatoria e il trattamento dell'artrosi cronica. L'effetto dei FANS sulla sintesi delle prostaglandine nei conigli è significativo. Le prostaglandine stimolano il rilascio di feci molli nei conigli inibendo la motilità intestinale prossimale e stimolando la motilità distale.

L'aspirina (Aspirina) inibisce la ciclossigenasi, che porta a una diminuzione della sintesi di prostaglandine e trombossanti, riduce l'aggregazione piastrinica e l'infiammazione. L'aspirina è un analgesico efficace per i conigli, è usata come primo soccorso, quindi molti proprietari di conigli la hanno a casa. La dose orale è di 100 mg/kg. La concentrazione massima nel siero del sangue nei conigli viene raggiunta dopo 1-2 ore. L'aspirina può causare una diminuzione delle piastrine e una tendenza a sanguinare nei conigli da laboratorio. Le proprietà analgesiche sono più deboli rispetto ad altri FANS come il carprofene e la flunixina.

Il carprofene è un debole inibitore della ciclossigenasi con un basso rapporto COX-1:COX-2 e tossicità minima. Carprofen, grazie alla sua disponibilità, può essere prescritto dopo l'intervento chirurgico a tutti i pazienti. Sebbene possa essere assunto per via orale (1,5 mg/kg 2 volte al giorno), gli studi hanno dimostrato che è meglio somministrarlo per via sottocutanea o endovenosa (2-4 mg/kg 1 volta al giorno).
Se somministrato per via sottocutanea, possono verificarsi effetti avversi associati al possibile ingresso del farmaco nel derma. Per ridurre il numero di complicazioni, è necessario assicurarsi che il farmaco sia entrato nel tessuto sottocutaneo e non nel derma e massaggiare l'area di iniezione dopo l'iniezione. Carprofen è particolarmente indicato per il dolore acuto dopo fratture e lesioni.

La flunixina è un potente inibitore della ciclossigenasi che è stato utilizzato con successo come agente antinfiammatorio nelle mucche e nei cavalli. I produttori non ne raccomandano l'uso fino a quando il paziente non si è completamente ripreso dall'anestesia generale, poiché questo FANS può portare a una diminuzione del flusso sanguigno renale. Inoltre, non può essere co-somministrato con altri farmaci nefrotossici come la gentamicina. La flunixina può essere utilizzata come farmaco analgesico e antinfiammatorio nei conigli alla dose di 1,1 mg/kg 2 volte al giorno, per via sottocutanea.
Di interesse è la possibilità di utilizzare inibitori della ciclossigenasi per il trattamento dell'enterotossiemia. Elmas M. et al. (2008) hanno utilizzato con successo flunixin 2,2 mg/kg e enrofloxacina 5 mg/kg per via endovenosa per questo scopo.

Ketoprofene (ketoprofene). Il ketoprofene è stato descritto in piccoli mammiferi, compresi i conigli, come alternativa al carprofene e al meloxicam. Applicare per via orale, due volte al giorno, alla dose di 1-3 mg/kg.

Meloxicam è un FANS con un basso rapporto COX-1:COX-2. Ha un forte effetto anti-artritico e scarso potenziale di causare irritazione gastrica negli animali rispetto ad altri FANS. Gli studi sulla sua tossicità hanno mostrato una buona tollerabilità e un'eccellente resistenza nei tessuti di coniglio.

Il rilascio dello stomaco da questo farmaco e il trasporto intestinale non sono influenzati dalle dosi terapeutiche di meloxicam, ad eccezione di un effetto a breve termine sull'acidità gastrica. Dosi significativamente superiori a quelle raccomandate per l'azione antinfiammatoria non hanno influenzato l'escrezione di acqua, elettroliti e creatinina durante l'intero periodo di osservazione. Dopo una singola somministrazione orale di meloxicam alla dose di 0,3 e 1,5 mg/kg, la concentrazione plasmatica massima del farmaco è stata raggiunta dopo 6-8 ore ed è stata rispettivamente di 0,14 e 3,0 μg/ml, diminuendo a un livello non rilevabile in 24 ore. Con un uso di cinque giorni del farmaco, non è stato osservato un cumulo, per raggiungere la concentrazione terapeutica richiesta quando usato una volta al giorno, sono necessarie dosi superiori a 0,3 mg / kg. Ai conigli può essere somministrato miele di fiori per l'analgesia a lungo termine in condizioni dolorose come l'artrite o la spondilosi alla dose di 0,1-0,2 mg/kg ogni 12 ore.

Carpenter JW et al. (2009), studiando la farmacocinetica del meloxicam nei conigli, hanno scoperto che la somministrazione orale del farmaco alla dose di 0,2-0,3 mg/kg una volta al giorno era sufficiente e non hanno riscontrato effetti collaterali dopo averlo utilizzato per 10 giorni. La concentrazione massima del farmaco nel plasma il primo giorno era 0,17 mcg/kg, il 10° giorno - 0,24 mcg/kg. Inoltre, Salhab AS et al. (2001) hanno scoperto che il meloxicam alla dose di 20 mg/kg intraperitonealmente inibiva l'ovulazione nei conigli quando somministrato 2 e 5 ore dopo il coito.

I FANS sono selezionati in base alla loro attività analgesica e antinfiammatoria. Farmaci come flunixin e carprofen forniscono effetti analgesici paragonabili agli analgesici oppioidi. Leach MC et al. (2009) hanno studiato l'effetto del dolore e dello stress sul comportamento dei conigli dopo l'ovarioisterectomia e la possibilità di utilizzare il meloxicam nel periodo postoperatorio. È stato riscontrato che per un'analgesia sufficiente in caso di danno ai tessuti molli, il coniglio necessita di grandi dosi del farmaco (dose iniziale - 1 mg / kg, successiva - 0,5 mg / kg / giorno) o una combinazione di meloxicam con analgesici oppioidi.
Cooper CS et al. (2009) hanno confrontato gli effetti sull'appetito nei conigli di meloxicam e buprenorfina per 7 giorni dopo l'intervento chirurgico, la conta delle feci e delle urine, il peso corporeo e i livelli di analgesia e hanno concluso che il meloxicam è una buona alternativa alla buprenorfina e, se usato, il rischio di l'anoressia e la stasi gastrointestinale sono minime.

Per garantire l'adeguatezza dell'anestesia, gli analgesici oppioidi e i FANS possono essere utilizzati contemporaneamente con il minimo rischio di effetti collaterali.
Quando un coniglio viene dimesso dall'ospedale, al proprietario viene chiesto di monitorare da vicino il comportamento dell'animale, l'assunzione di cibo e le feci solide. Il coniglio deve essere portato per un riesame se non ha mangiato per più di 24 ore. Se il proprietario del coniglio non è sicuro se il coniglio sta mangiando o ha un appetito ridotto, l'animale deve essere ricoverato in ospedale per ulteriori osservazioni. Un coniglio che non inizia a mangiare dopo l'intervento chirurgico ha bisogno di un trattamento per prevenire o correggere la stasi gastrointestinale e rivalutare le prescrizioni post-operatorie.

Letteratura

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Nel sangue sono stati determinati il ​​numero di eritrociti, il contenuto di emoglobina in essi, la VES, l'indice di colore, il numero di leucociti e il leucogramma è stato studiato secondo i metodi generalmente accettati in ematologia.

Il sangue per ottenere il siero è stato prelevato dalla vena giugulare in provette asciutte prima della somministrazione dei farmaci, 24 ore, 1, 3, 7 e 14 giorni dopo l'esperimento.

Nel siero del sangue sono stati determinati: la quantità di glucosio, proteine ​​totali, l'attività di AST e ALT, la concentrazione di bilirubina totale, urea, creatinina utilizzando un analizzatore biochimico semiautomatico BioChem SA.

Gli studi elettrocardiografici sono stati eseguiti utilizzando un elettrocardiografo EK 14 T, la registrazione è stata eseguita nella seconda derivazione; la valutazione è stata effettuata con un metodo generalmente accettato in cardiologia.

L'orchiectomia nei conigli è stata eseguita in modo chiuso.

L'esame ecografico degli organi addominali dei conigli è stato effettuato utilizzando uno scanner a ultrasuoni veterinario portatile PU 2200 Vet prima della somministrazione di farmaci, 10 minuti dopo la somministrazione di una soluzione al 2% di xilazina cloridrato, Zoletil, nonché la loro combinazione dopo 10, 30, 60, 90, 120, 150 e 180 minuti secondo il metodo da noi sviluppato.

Il quadro morfologico degli organi addominali è stato valutato all'autopsia dei conigli in diversi periodi dello studio: senza l'uso di Rometar e Zoletil (gruppo di controllo), 30 minuti dopo la somministrazione di questi farmaci, 1 giorno dopo l'intervento chirurgico e 7 giorni dopo l'anestesia generale.

Per gli studi istologici, i pezzi d'organo sono stati fissati in formalina neutra al 10%, le sezioni istologiche sono state preparate su un microtomo a slitta di 5-7 µm di spessore, colorato con ematossilina ed eosina.

L'elaborazione statistica del materiale digitale dei risultati dello studio è stata effettuata con il metodo della statistica di variazione utilizzando il pacchetto software Microsoft Excel XP, derivando M, m, il coefficiente di affidabilità P, tenendo conto del criterio di Student.

Il grado di affidabilità degli indicatori rispetto a quelli antecedenti l'esperienza contrassegnati con * erano inferiori a 0,05.

3. RISULTATI DELLA RICERCA

3.1. Selezione dei farmaci e valutazione del grado di generale

anestesia nei conigli

Gli studi condotti hanno permesso di determinare la variante più ottimale dell'anestesia generale per i conigli. In tutti i casi è stata giustificata la premedicazione con una soluzione al 2% di xilazina cloridrato.

L'introduzione del rometar è stata accompagnata da cambiamenti caratteristici dei farmaci di questo gruppo. In 5-10 minuti dopo la somministrazione del farmaco, gli animali hanno abbassato la testa, sono stati osservati sedazione e una diminuzione della sensibilità al dolore, tuttavia i conigli hanno mostrato una resistenza abbastanza attiva ad alcune manipolazioni associate alla fissazione in posizione laterale.

La somministrazione endovenosa a getto di un'emulsione acquosa di propofol all'1% ha causato un pronunciato rilassamento dei muscoli delle estremità, ma la sensibilità al dolore persisteva, il che escludeva la possibilità di interventi chirurgici.

L'inalazione con etere ha causato l'assenza di riflessi e sensibilità al dolore entro 10 minuti, il tono dei muscoli delle mascelle e delle palpebre - 15 minuti. Dopo 30 minuti, i conigli hanno cercato di alzarsi e dopo 40 minuti hanno potuto cambiare autonomamente la posizione del corpo nello spazio.

L'uso di Zoletil-50 come mononarcosi ha fornito un rilassamento muscolare istantaneo e l'assenza di sensibilità al dolore entro 5 minuti. Dopo 30 minuti l'attività motoria dei conigli è stata ripristinata e dopo 1 ora hanno potuto muoversi autonomamente.

Sullo sfondo della sedazione con Rometar, l'introduzione di Zoletil-50 sia per via intramuscolare che endovenosa ha permesso di raggiungere la fase chirurgica dell'anestesia. In 25-30 minuti dopo la somministrazione intramuscolare e 30-35 minuti dopo la somministrazione endovenosa, la sensibilità al dolore è stata ripristinata, dopo 45-60 minuti i conigli hanno cercato di alzarsi e dopo 90 minuti potevano muoversi autonomamente.

3.2. Influenza dei farmaci antidolorifici e loro combinazioni sullo stato clinico, parametri ematici morfologici, biochimici e attività cardiaca dei conigli

3.2.1. L'effetto del rometar e dell'etere sul corpo dei conigli

La premedicazione con rometar ha causato un leggero aumento della temperatura corporea nei conigli del primo sottogruppo di questo gruppo, che è stato sostituito da una diminuzione del valore di questo indicatore dopo l'uso di etere ed è persistito per tre ore.

10 minuti dopo la somministrazione di rometar si è verificata una diminuzione del polso e della frequenza respiratoria, che, 10 minuti dopo l'uso dell'etere per l'anestesia, sono stati sostituiti da un aumento, ma già 30 minuti dopo si è manifestata una tendenza a diminuire, e un giorno dopo, i valori della frequenza cardiaca e dei movimenti respiratori si sono avvicinati all'originale.

Nella composizione morfologica del sangue dei conigli di questo sottogruppo, entro un'ora, c'era una tendenza a ridurre il numero di eritrociti e il contenuto di emoglobina in essi contenuto. Dopo la sedazione con rometar, il contenuto dei leucociti è leggermente aumentato, che è stato sostituito da una diminuzione del loro numero dopo l'uso dell'etere. Tre ore dopo l'anestesia è stato registrato un forte aumento del numero di leucociti e solo il settimo giorno questo indicatore è tornato al livello iniziale (Fig. 1, 2).

I cambiamenti nei leucogrammi riguardavano principalmente il numero di forme segmentate e pugnalate di neutrofili e linfociti.

10 minuti dopo la somministrazione intramuscolare di rometar, è apparsa una tendenza all'aumento della percentuale di neutrofili segmentati, che persisteva per tre ore anche dopo l'inalazione di etere. I cambiamenti nel numero di linfociti erano simili ai cambiamenti nei neutrofili segmentati, ma con il segno opposto (Fig. 3, 4).

Nella composizione biochimica del siero del sangue si è verificata una diminuzione dell'attività di glucosio, ALT e AST, un aumento della concentrazione di bilirubina totale, urea, creatinina e proteine ​​totali. Quasi tutti gli indicatori hanno raggiunto il livello iniziale dopo 14 giorni (Tabella 2).

Dopo l'introduzione del rometar, si è verificata una diminuzione della frequenza cardiaca, un allungamento sia del periodo sistolico che diastolico e una significativa diminuzione dell'ampiezza dell'onda R. L'inalazione dell'etere ha portato a una diminuzione della durata degli intervalli Q-T e R-R , deformazione dell'onda P che ha preceduto non tutti i complessi QRS, un aumento dell'ampiezza dell'onda T, che è diventata negativa, una diminuzione dell'ampiezza dell'onda R.

Dopo 24 ore, i risultati degli elettrocardiogrammi praticamente non differivano da quelli iniziali.

3.2.2. L'effetto dello zoletil sul corpo dei conigli

Quando si studiano gli indicatori che caratterizzano lo stato clinico dei conigli sperimentali del secondo sottogruppo del primo gruppo, una diminuzione della temperatura corporea, una diminuzione della frequenza cardiaca e dei movimenti respiratori, che possono essere rintracciati entro 3 ore dalla somministrazione del farmaco e raggiungendo il livello iniziale dopo 1 giorno, sono stati stabiliti.

Dopo la somministrazione endovenosa di Zoletil, è stata osservata una diminuzione del numero di eritrociti e del loro contenuto di emoglobina. Il giorno dopo, questi indicatori praticamente non differivano dai dati ottenuti prima della somministrazione del farmaco. Questi cambiamenti sono stati accompagnati da un aumento del numero di leucociti, che è persistito per tre giorni (Fig. 1, 2).

Nei leucogrammi, è stato notato un aumento della percentuale di neutrofili da coltellata già un'ora dopo l'introduzione degli animali in anestesia ed è rimasto a questo livello per tre giorni. Un'ora dopo l'inizio dell'anestesia, il numero di neutrofili segmentati è aumentato, il che, come negli animali del sottogruppo precedente, ha portato a una diminuzione del numero di linfociti e, al contrario, contemporaneamente allo studio (Fig. 3 , 4).

Entro tre giorni dalla somministrazione endovenosa di Zoletil, sono stati osservati una diminuzione dei livelli di glucosio e un aumento della quantità di proteine ​​totali nel siero del sangue.

10 minuti dopo la somministrazione di Zoletil, si è verificata una leggera diminuzione della frequenza cardiaca, una diminuzione dell'ampiezza dell'onda S in alcuni cicli. Un'ora dopo, in cicli separati, è stata notata l'extrasistole, un aumento dell'ampiezza delle onde P e R e l'onda T è diventata negativa. La durata degli intervalli R-R e Q-T è aumentata.

Il giorno dopo, i valori dell'elettrocardiogramma si sono avvicinati a quelli iniziali.

3.2.3. Influenza di rometar e zoletil sul corpo dei conigli

Dopo l'introduzione di Zoletil sullo sfondo della sedazione con rometar nei conigli, è iniziata una diminuzione della temperatura corporea e dopo tre ore ha raggiunto un livello minimo (35,2±0,36 °C).

Il rallentamento del polso osservato dopo la somministrazione di rometar è stato sostituito da una normalizzazione a breve termine dopo la somministrazione di zoletil, dopo di che è stata nuovamente osservata bradicardia. I cambiamenti descritti sono stati accompagnati da una diminuzione della respirazione. Il giorno dopo, i valori di questi indicatori praticamente non differivano da quelli pre-sperimentali.

Entro un'ora dalla somministrazione di Zoletil è stata osservata una tendenza alla diminuzione del numero di eritrociti e del loro contenuto di emoglobina, sostituita da un rapido recupero del numero di eritrociti, che dopo tre ore non differiva significativamente dai dati ottenuti prima la somministrazione di Rometar e Zoletil (Fig. 1).

Nell'immagine del sangue bianco, i cambiamenti erano simili a quelli dei conigli del primo sottogruppo di questo gruppo, ma con un grado di gravità minore.

Il numero di leucociti è aumentato 10 minuti dopo la premedicazione e dopo la somministrazione di Zoletil-50 è diminuito entro 30 minuti. Tre ore dopo si è notato un aumento del contenuto di leucociti, che è stato sostituito da una diminuzione e ha raggiunto un valore minimo il terzo giorno, quindi si è manifestata una tendenza ad aumentarlo (Fig. 2).

I cambiamenti nei leucogrammi erano simili a quelli degli animali del secondo sottogruppo, ma meno pronunciati. 10 minuti dopo l'applicazione di Zoletil-50, nel sangue sono comparsi giovani neutrofili, che in altri momenti dello studio non sono stati trovati nel sangue periferico dei conigli di questo sottogruppo. La percentuale di forme di coltellate dei neutrofili è diminuita 10 minuti dopo la premedicazione. 10 minuti dopo aver raggiunto la fase chirurgica dell'anestesia, è stato notato un aumento della percentuale di neutrofili da coltellata, che è durato 24 ore e solo il settimo giorno il loro numero si è avvicinato a quello iniziale.

Il numero di neutrofili segmentati 10 minuti dopo la somministrazione

Figura 1 - Cambiamenti nel numero di eritrociti in Figura 2 - Cambiamenti nel numero di leucociti in

conigli del secondo gruppo, 1012/l conigli del secondo gruppo, 109/l

Figura 3 - Variazioni percentuali Figura 4 - Variazioni percentuali

neutrofili segmentati nei conigli linfociti nei conigli del secondo gruppo

secondo gruppo

Tabella 2 - Variazioni dei parametri biochimici del siero sanguigno dei conigli

numero di sottogruppo	Date di ricerca	Glucosio, mmol/l	Urea, mmol/l	Bilirubina, µmol/l	Al AT, E/l	Ac AT, E/l	Proteine ​​totali, g/l	Creatinina, µmol/l
1	Prima della somministrazione del farmaco	6,15±0,86	4,95±1,09	2,06±0,61	55,6±2,88	16.2±3.96	64.31±3.29	122,8±8,35
	1 giorno	3,69±0,51*	9,41±1,88*	2.84±1.00	41,6±7,02*	13.2±2.77	73.02±5.21*	204,6±13,72*
	3 notti	3,07±0,86*	8.08±1.55*	3,87±0,72*	49,0±5,43	16.2±6.22	72,98±5,24*	218,8±15,04*
	7 notti	3,62±0,63*	6.37±1.42	7,23±1,84*	51,0±5,52	16.8±5.59	70,14±2,64*	169,6±8,88*
	14 giorni	6,18±0,70	4,98±0,88	2,13±0,55	55,2±2,77	16.2±3.63	64.28±3.42	123,6±5,94
2	Prima della somministrazione del farmaco	6,47±0,67	4,73±0,54	2,22±0,77	49.6±3.05	15.2±3.96	63,5±6,34	117,4 ± 10,95
	1 giorno	3,13±0,47*	2,82±0,43*	3,99±0,63*	64,6±7,86*	11.8±3.7	73.3±9.31	140,86±9,65*
	3 notti	1,99±0,10*	4,95±0,78	0,83±0,44*	49,8±6,87	60.8±16.02*	81.03±8.8*	65,8±4,87*
	7 notti	3,18±0,31*	5,31±0,59	2,5±0,84	50,4±4,34	46,4±10,88*	77.04±8.46*	104.00±11.60
	14 giorni	6,44±0,59	4,76±0,47	2,21±0,71	50.00±2.35	15.60±3.36	63.3±4.9	117,8±9,65
3	Prima della somministrazione del farmaco	5,44±0,66	7.08±2.45	2,71±1,29	57.6±11.74	14.2±2.28	59.54±2.18	110,0±23,8
	1 giorno	3,31±0,32*	4,88±0,77	3,35±1,51	25.00±12.88*	35,6±6,19*	71.89±6.00*	171,6±25,60*
	3 notti	3,44±1,22*	5,97±2,52	2.68±1.17	44.00±16.72	17,8±2,59	68.45±5.01*	155.00±35.04
	7 notti	4,75±1,17	8.80±1.11	4.61±2.39	50.6±15.22	14.6±3.36	76,51±2,11*	141,2±20,71
	14 giorni	5,46±0,74	7.14±2.39	2.69±1.18	57.8±11.39	14.2±2.39	59.74±3.15	116,8±19,92

La castrazione è una soluzione al problema della fertilità dei conigli. Chi non conosce l'espressione comune "razza come conigli"! Questo animale è diventato praticamente un simbolo di fertilità, che, ovviamente, non dovrebbe essere dimenticato dai proprietari di animali dalle orecchie decorative, avendo una versione decorativa degli animali domestici.

Per evitare molti eventi avversi, gli esperti raccomandano la sterilizzazione o la castrazione tempestiva di loro. Cosa minaccia questo o, al contrario, non minaccia il coniglio e dovrebbe essere fatto?

Questa operazione può essere sottoposta sia alla femmina che al maschio. Nel primo caso, i conigli vengono legati alle tube di Falloppio, creando artificialmente la loro ostruzione, e per i conigli "maschi" vengono rimossi i dotti seminali o un loro frammento.

Cioè, in generale non si verificano gravi interferenze nel corpo del coniglio: i genitali non vengono rimossi, funzionano, come si suol dire, in modalità normale, continuando a produrre ormoni. L'istinto sessuale negli individui non è disturbato, non diminuisce, sono in grado di accoppiarsi. Ma l'obiettivo della procedura stessa - impedire che i conigli si moltiplichino in modo incontrollabile - è stato raggiunto.

Dopo la sterilizzazione, l'animale può perdere peso o diventare aggressivo. La sterilizzazione può in qualche modo influenzare il corpo del coniglio? A causa del naturale bisogno di procreazione, e anche con un sistema riproduttivo normalmente funzionante, i conigli sterilizzati sono soggetti a gravi alterazioni ormonali.

Il corpo dell'animale è esposto a stress, che possono causare seri problemi di salute, in particolare problemi al sistema genito-urinario. Un povero animale domestico può, per così dire, perdere peso senza una ragione apparente, rifiutarsi di mangiare, nel suo comportamento compaiono elementi di aggressività anche nei confronti dei proprietari.

Castrazione: pro e contro

La castrazione è un'operazione per rimuovere completamente gli organi riproduttivi, quelli. a causa sua, i conigli perdono le ovaie (castrazione parziale) o insieme all'utero (completo) ed entrambi i testicoli vengono rimossi dai maschi.

Se la sterilizzazione elimina solo la funzione di riproduzione con tutte le conseguenti conseguenze ormonali, allora la castrazione dei problemi ormonali nel corpo del coniglio non crea.

Svantaggi

Bisogna ammettere che un tale intervento chirurgico, con molti vantaggi, di cui parleremo di seguito, presenta anche dei momenti spiacevoli:

• come ogni operazione, è trauma e stress(sia per l'animale domestico che per il proprietario);
• spesa in contanti;
• cure extra.

professionisti

Nonostante alcuni esperti "contrari", rispondendo alla domanda "è necessario castrare i conigli decorativi?", affermano che per i maschi con le orecchie di entrambi i sessi, la castrazione è l'opzione migliore. Per - molti argomenti:

A che età farlo

Succede spesso che la castrazione debba essere eseguita su un peloso già di mezza età per motivi di salute. Tuttavia, i veterinari ritengono che sia meglio farlo quando il coniglio è ancora giovane, sano ed energico.

La sterilizzazione deve essere eseguita quando l'animale ha sei mesi. Il coniglio raggiunge la maturità sessuale a circa 4 mesi, e in linea di principio l'operazione è già possibile. Tuttavia, 6 mesi di età sono considerati più sicuri.

Un indicatore per i maschi è la discesa dei testicoli nello scroto. Questo accade anche all'incirca alla stessa età - 3,5-4 mesi.

Non vale la pena fare un'operazione del genere prima: non solo è tecnicamente più difficile, ma è anche imprevedibile per la salute del coniglio.

Anche il "dottore Aibolit" non si impegnerà a castrare un vecchio coniglio. Statisticamente, la probabilità di un esito negativo dell'operazione aumenta con l'età. E anche un paziente che ha superato il limite di età di due anni dovrebbe essere già sottoposto a un esame approfondito con test.

Se il coniglio ha più di 4 anni, la probabilità della sua morte è molto più alta di quella della sua controparte di 6-9 mesi.

Quando non è ancora possibile?

Se un animale domestico è in sovrappeso, non sarà castrato finché non torna alla normalità.

Faranno lo stesso in presenza di alcune malattie: prima il paziente lanuginoso deve essere curato.

Com'è l'operazione

Anestesia. Le procedure operative per maschi e femmine sono diverse. Nei conigli, i testicoli vengono completamente rimossi. Questo può essere fatto praticando una o due incisioni.

Nella prima variante, entrambi i testicoli vengono rimossi attraverso un'incisione, nella seconda vengono praticate incisioni su ciascuno di essi e gli organi vengono rimossi separatamente. Tutto questo viene fatto in anestesia locale.

Le incisioni trattate con antisettico possono rimanere aperte. L'opzione "chiusa" prevede la sutura o l'applicazione di colla chirurgica.

L'operazione nella femmina è più complicata. Tutti gli organi riproduttivi vengono rimossi dal coniglio e tale intervento richiede l'uso dell'anestesia. Dopo la rimozione, vengono suturati anche i vasi sanguigni che alimentavano questi organi e vengono posizionate suture per chiudere l'incisione.

Se sei preoccupato per la qualità e l'effetto dell'anestesia sull'animale operato, devi "monitorare" in anticipo le cliniche veterinarie, studiare le recensioni dei proprietari che hanno riscontrato un tale problema e scegliere uno specialista che abbia già una vasta esperienza in trattamento, compresi chirurgici, conigli ornamentali.

Operazione: prima e dopo

Prima del momento cruciale, dovresti chiarire in clinica:

• a cosa sarà sottoposto il tuo animale domestico: sterilizzazione o castrazione;
• quali test devono essere eseguiti in aggiunta;
• quali farmaci o dispositivi potrebbero essere necessari nel periodo postoperatorio;
• come preparare un coniglio per un intervento chirurgico.

Non dovresti tenere il tuo animale domestico per mezza giornata con una "dieta da fame". Per un animale che mastica costantemente, questo è stressante. Hai solo bisogno di ridurre la dose abituale.

... Ma ora tutte le manipolazioni necessarie per prevenire l '"esplosione demografica" dei conigli sono state completate e ora sta arrivando il periodo cruciale: le cure postoperatorie. Come effettuarlo, devi sicuramente scoprirlo anche in una clinica veterinaria.

Assicurati di chiedere al medico quale comportamento ci si può aspettare dal coniglio operato, in modo da non aver paura delle "anomalie"; come dovrebbero apparire il sito di incisione e la sutura postoperatoria; come elaborarli.

Devi essere preparato per cosa nelle prime ore postoperatorie, il coniglio barcolla e può comportarsi in modo molto insolito.

Deve essere collocato in uno spazio abitativo pulito e offrire comfort, pace e bevande. Anche il vassoio deve essere pulito e riempito con stucco fresco (in opzione - con ritagli di carta - un materiale completamente neutro).

Il cibo può essere offerto dopo poche ore, ma non è consentito mangiare troppo almeno per i primi tre giorni.

Parla con il tuo medico di come prenderti cura del tuo animale domestico dopo l'intervento chirurgico. Osserva l'appetito del tuo animale domestico, la minzione e le feci. Se improvvisamente noti che non mangia, che non urina da molto tempo, o non ha feci o, al contrario, si verifica la diarrea, questo è un motivo per contattare uno specialista.

Il sito operato dovrebbe essere esaminato periodicamente. La cucitura deve essere asciutta e pulita. Un coniglio ha spesso il desiderio di rosicchiare le cuciture: è necessario proteggerle in qualche modo, nonostante il rifiuto attivo dell'animale di tutti i tipi di bende e colletti protettivi.

Se la cucitura "sembra" normale, non ha bisogno di essere trattata con nulla. Ma un anestetico per un coniglio, e soprattutto un coniglio, non farebbe affatto male. Il dolore può rallentare il recupero postoperatorio di un animale, interferendo sia con l'alimentazione che con l'igiene personale.

Nonostante il fatto che dopo un paio di giorni il coniglio richiederà un movimento attivo nella stanza, per ora non permetterlo: il sito dell'incisione potrebbe essere ferito e ferito.

Non preoccuparti se noti gonfiore dello scroto. Se ciò viene osservato per non più di due settimane, è considerata la norma.

Dopo la castrazione, i conigli non possono essere sistemati con i conigli"età fertile. Il fatto è che nel maschio operato, lo sperma rimasto nel dotto deferente mantiene a lungo le sue proprietà e il livello di testosterone non scende immediatamente a "zero", quindi il coniglio tenterà l'accoppiamento per altre 3-4 settimane, e il coniglio può rimanere incinta.

Prezzo di emissione

L'operazione di sterilizzazione o castrazione, ovviamente, è una procedura a pagamento. Quanto costa varia nelle diverse città e anche nelle diverse cliniche. Negli istituti veterinari privati, il prezzo è generalmente più alto rispetto a quelli pubblici.

Castrare un maschio costa meno di una femmina. Questo può anche dipendere dalla razza di orecchie. Spesso è uguale o superiore al prezzo del "paziente". Il costo della procedura chirurgica vera e propria a partire da 2000 rubli. Dobbiamo aggiungere il prezzo di anestesia, materiali di consumo, medicinali, contagocce e studi aggiuntivi: ultrasuoni, test, eco ed elettrocardiogramma. È possibile che dovrai lasciare il tuo animale domestico in clinica per un po' di tempo.

Non devono essere scontati e tali voci di spesa come il trasporto avanti e indietro, un consulto preliminare con un veterinario e il suo esame finale, nonché l'acquisto di dispositivi di protezione (benda/collare).

Se sei un felice proprietario di un paio di conigli decorativi, per evitare il problema della sovrappopolazione dei conigli, devi sicuramente decidere in anticipo cosa fare con gli interessi sessuali dei tuoi animali domestici e quale dei modi sembrerà più umano per te - sterilizzazione o castrazione, dopo aver studiato i consigli e il feedback di esperti e colleghi per hobby.

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Perché i conigli vengono castrati o sterilizzati:
- Si ritiene che i conigli castrati e castrati siano più sani e quindi vivano più a lungo. Sterilizzando i conigli, in realtà elimini il rischio di contrarre il cancro degli organi riproduttivi delle femmine. Un maschio castrato, invece, vivrà molto più a lungo e riceverà meno ferite per il fatto che smette di cercare di combattere con altri animali domestici (altri conigli, gatti, ecc.).
—I conigli sterilizzati e castrati sono più amichevoli e socievoli. Sono più calmi, più affettuosi, prevedibili. Inoltre, i conigli fanno molti meno guasti in casa (rosicchiano meno i mobili e scavano buchi nei tappeti), l'aggressività diminuisce (tentativi di mordere, graffiare, ringhiare ai proprietari, scoppiare e scappare). Dopo l'operazione loro
-Smetti di colpire. Dopo la castrazione e la sterilizzazione, i conigli, sia maschi che femmine, smettono di marcare il loro territorio e sono molto più facili da imparare ad andare in bagno in un posto rispetto a prima.
—Castrazione e sterilizzazione dei conigliè un po' il tuo contributo al controllo delle nascite degli animali. Più di 15.000 meravigliosi animali domestici come gatti, conigli, cani muoiono ogni anno nel nostro Paese (in questo contesto, gli USA) per freddo e fame, abbandonati dai loro proprietari al loro destino. Molti animali muoiono per essere stati rilasciati nei parchi forestali o semplicemente per strada, dove vengono privati ​​del cibo e muoiono per malattie, e sono anche facili prede di altri animali e/o muoiono correndo dall'altra parte della strada. Non è affatto un dato di fatto che i conigli che consegni al negozio di animali troveranno una vita migliore. Perché saranno venduti come merce al primo acquirente che si imbatterà e nessuno controllerà a quale scopo vengono acquistati gli animali. Molti conigli verranno dati in pasto ai serpenti o acquistati come regalo per un bambino che presto si annoierà.
—Castrati e castrati in modo molto più compiaciuto e giocoso relazionarsi con nuovi amici. I conigli sono animali sociali e le piace fare amicizia con altri conigli. Ma fino a quando non vengono sterilizzati, sfortunatamente non possono trattare un altro coniglio come amico, a causa di molestie sessuali (del sesso opposto) o aggressione nei confronti di conigli dello stesso sesso, che è causata dagli ormoni.
—La sterilizzazione e la sterilizzazione dei conigli sono sicure(a condizione che tu abbia contattato un veterinario esperto). La Domestic Rabbit Association www.rabbit.org ha visto questo tipo di operazione più di mille volte. I decessi rappresentano circa lo 0,1% di tali operazioni, la causa principale è l'anestesia. Un veterinario esperto di conigli eseguirà questa operazione con poco o nessun rischio per la salute del tuo animale domestico. Non lasciare che un veterinario basso o inesperto esegua questo tipo di intervento chirurgico sul tuo animale domestico.
L'operazione è davvero sicura per i conigli?
Questa operazione è sicura per i conigli come lo è per altri animali. Sfortunatamente, la maggior parte dei veterinari non sa come eseguire interventi chirurgici sicuri sui conigli. Non permettere a un veterinario inesperto o a un veterinario che non ha lavorato con i conigli di operare sul tuo animale domestico. È inoltre necessario prendersi cura adeguatamente del coniglio prima e dopo l'operazione.
A che età si può operare un coniglio?
Le femmine possono essere operate dopo la pubertà a 4 mesi, ma la maggior parte dei veterinari preferisce aspettare fino a sei mesi di età, poiché i conigli più giovani possono subire un intervento chirurgico meno senza lama. I maschi vengono castrati a partire dai 3,5 mesi di età non appena le loro ovaie scendono, ma la maggior parte dei veterinari consiglia di aspettare fino a cinque mesi.
A che età è troppo tardi per questa operazione?
I veterinari la pensano diversamente, ma sono d'accordo su una cosa: dopo i sei anni, sia l'anestesia che l'operazione stessa diventano più pericolose per la salute. Questa idea è sempre opportuna, l'unica cosa è che, se il tuo coniglio ha più di due anni, vale la pena fare un esame preliminare, soprattutto del sistema cardiovascolare. L'esame può costarti molto di più dell'operazione stessa, ma potrebbe rivelare i motivi per cui l'operazione potrebbe essere più pericolosa per il tuo animale domestico. L'esame preliminare è particolarmente importante per la scelta dell'anestesia.
Come determinare se una femmina è stata sterilizzata dai precedenti proprietari o da un allevatore?
C'è un'alta probabilità che la femmina non sia stata sterilizzata. Puoi radere il basso addome e vedere se c'è una cicatrice lì. Tuttavia, le moderne tecniche consentono ai veterinari di eseguire tali operazioni senza lasciare cicatrici. C'è la possibilità che il veterinario applichi un marchio sull'addome, indicando che l'operazione è stata eseguita, ma è improbabile. Pertanto, l'unico modo è controllare quest'ultima operazione.
Quali domande dovrei porre a un veterinario in una clinica veterinaria?
Quanti proprietari di conigli ti contattano all'anno?
Quanti neutri/neutri ha fatto questo veterinario nell'ultimo anno?
Qual è la percentuale di transazioni riuscite? Il 90% delle operazioni riuscite è una percentuale troppo piccola per questo tipo di operazioni. Qualsiasi medico, veterinario o umano, perde un paziente per caso, di solito a causa di una malattia o disturbo non diagnosticato. I veterinari di tutto il paese (USA) che hanno castrato/castrato conigli per la House Rabbit Society hanno perso la vita in meno dello 0,5% del numero totale di animali operati. - Se ci sono stati dei decessi, qual è stata la causa?
Il medico rimuove sia le ovaie che l'utero? (il veterinario deve rimuovere entrambi gli organi)
Il medico esegue un intervento di castrazione "aperto" o "chiuso"? (È preferibile chiuso - lascia che il tuo medico spieghi la differenza.)
Il passaggio chirurgico (ingresso) ai testicoli avverrà attraverso lo scroto o attraverso l'addome? (Il passaggio attraverso la cavità addominale aumenta inutilmente il trauma del coniglio maschio).
Il veterinario richiede che l'animale si astenga dal mangiare e dal bere prima dell'intervento chirurgico? (È meglio non farlo - un coniglio non può vomitare, quindi questo non è da temere durante l'operazione e non dovrebbe essere permesso di svuotare completamente il tubo digerente del coniglio).
Quali anestetici verranno utilizzati? (Molti veterinari hanno avuto molto successo nell'esecuzione di operazioni utilizzando un anestetico diverso dall'isoflurano. Ma dopo di loro, il coniglio sarà come ubriaco ("sbornia") e molto probabilmente non sarà in grado di mangiare per molto tempo dopo l'operazione , che a sua volta causerà seri problemi, se non te ne occupi in tempo.
Discutere le cure operative e postoperatorie con il veterinario. Scopri come verranno individuati eventuali problemi, con quale frequenza il veterinario o il suo assistente potranno visitare il tuo bambino? Faranno qualcosa per identificare possibili problemi postoperatori? Che tipo di cure verranno fornite al tuo animale domestico subito dopo l'operazione: ossigeno, calore, pace (cani che abbaiano e gatti che miagolano nelle gabbie vicine non sono l'opzione migliore). Cosa faranno i medici per riportare in vita il coniglio?! Fare domande! Questo attirerà l'attenzione del veterinario. Fagli sapere che sei preoccupato per la salute del tuo animale domestico e controllerai rigorosamente le sue azioni.
Quali cure pre e postoperatorie dovrebbero essere somministrate a un coniglio?
Dai al tuo coniglio acidophilus un paio di giorni prima dell'intervento chirurgico, solo per assicurarti che il sistema digestivo del coniglio stia bene.
Non modificare in alcun modo la sua dieta. Dopo l'operazione, somministrare anche acidophilus fino a quando l'appetito non torna alla normalità.
Controllare le cuciture ogni giorno. Dopo la castrazione, lo scroto può essere riempito di liquido. Un impacco caldo ti tornerà utile, ma non preoccuparti troppo. Se c'è un accenno di infezione, porta immediatamente il coniglio dal veterinario.
Tenere la femmina operata separata dai maschi(castrazione o meno non importa) in quanto potrebbe essere gravemente ferita se il maschio cerca di coprirla. Dopo l'operazione, assicurati che sia tranquillo e calmo in modo che il coniglio non si spaventi e non si faccia prendere dal panico, non provochi piroette acrobatiche, ma consenti al coniglio di muoversi liberamente nel luogo abitabile: il coniglio stesso sa cosa farà male lui e cosa no.
Molti veterinari lasciano i conigli in clinica durante la notte. Se il veterinario ti permette di portare a casa il coniglio, devi sapere quanto segue:
-Molti maschi che tornano a casa dopo l'intervento chirurgico sperano di trovare una cena deliziosa, assicurarsi che abbiano i loro pellet preferiti, acqua e un mucchio di fieno fresco (una buona erba medica fresca aiuterà il coniglio a ritrovare l'appetito).
-Molte femmine preferiscono essere lasciate sole, non mostrano appetito e si siedono tranquille nell'angolo più lontano della gabbia o in quell'angolo della casa dove possono essere sicure di non essere disturbate.
La mattina successiva o la sera del giorno successivo all'operazione, è necessario che il coniglio mangi qualcosa. Non importa cosa e quanto, perché con l'assunzione di cibo, il tubo digerente continuerà a funzionare. Se il coniglio continua a non mangiare, allora, come ultima risorsa, preparare una miscela di pellet di coniglio (1 parte di pellet e 2 parti di acqua, macinare bene in un frullatore, aggiungere acidophilus e somministrare in piccole porzioni attraverso una siringa (senza ago ) dal lato della bocca un coniglio). La femmina può rimuovere accidentalmente i punti. Cuci di nuovo e poi fai una benda avvolgendo un tovagliolo intorno alla sua pancia e fissandolo con una benda elastica. Assicurati che il coniglio possa respirare liberamente, ma che la benda sia ben fissata.

UDC 619:636.92:615.211

Farmaci iniettabili e loro combinazioni utilizzati per l'anestesia dei conigli

Farmaci iniettabili utilizzato per introdurre conigli in anestesia durante varie procedure diagnostiche e terapeutiche. Il loro uso è possibile sia indipendentemente che prima dei farmaci per inalazione. L'anestesia per iniezione, a differenza dell'inalazione, non richiede attrezzature particolari, per questo molti veterinari sono costretti ad utilizzare questa metodica. Attualmente, vengono utilizzate più spesso varie combinazioni di farmaci per iniezione e anestesia per inalazione.

L'esperienza accumulata mostra che molti farmaci usati per la sedazione, l'anestesia e l'analgesia possono essere usati anche per i conigli, ma dosi efficaci e sicure di farmaci, la loro farmacodinamica e l'uso di combinazioni di farmaci hanno caratteristiche significative. Di seguito sono descritti alcuni preparati e loro combinazioni, il cui effetto sull'organismo dei conigli è stato studiato e che potrebbero interessare i veterinari nel nostro paese.

acepromazina ( Acepromazina maleato) - un derivato della fenotiazina, ha un effetto deprimente sul sistema nervoso centrale. È un inibitore della dopamina, un bloccante alfa-adrenergico con debole attività antimuscarinica. L'uso principale dell'aceromazina in medicina veterinaria è il suo effetto tranquillante, quelli aggiuntivi includono l'effetto antiaritmico e l'effetto antispasmodico. È comunemente usato per la premedicazione negli animali di molte specie. L'aceromazina ha un effetto ipotensivo e non ha attività analgesica. Dose per conigli come tranquillante 1 mg/kg IM, l'effetto dovrebbe manifestarsi entro 10 minuti e durare 1-2 ore . Ghaffari MS et al., (2009) hanno scoperto che l'aceromazina a dosi normali riduceva la produzione lacrimale nei conigli. . Nei conigli, l'aceromazina può essere utilizzata come premedicazione prima dell'anestesia con gas. Può essere utilizzato in combinazione con butorfanolo per una migliore sedazione.

xilazina(Xilazina) - è un antagonista alfa 2-adrenergico, ha un moderato effetto sedativo e un lieve effetto analgesico nei conigli. Provoca il rilassamento dei muscoli scheletrici attraverso un'azione centrale. In precedenza, veniva usato come farmaco singolo o in combinazione con la ketamina. Questa combinazione provoca depressione respiratoria e circolatoria e, a dosi elevate, aritmie cardiache ed elevata mortalità nei conigli. L'atipamezolo, un bloccante alfa-adrenergico, può essere usato come antagonista per fermare l'azione della xilazina.

medetomidina(La medetomidina (Domitor, Pfizer) è un agonista alfa 2 più specifico della xilazina con minori effetti collaterali. È significativamente più costoso e richiede dosi più elevate nei conigli rispetto ad altre specie animali. La medetomidina può essere usata come premedicazione o in combinazione con ketamina per anestesia chirurgica... La medetomidina provoca la costrizione dei vasi periferici, modificando l'afflusso di sangue alle mucose, in modo che possa essere erroneamente determinato che l'animale ha cianosi.Quando si usa la medetomidina, si sviluppa spesso l'ipossia, in modo che l'intero periodo di anestesia richiede l'uso di ossigeno.

La vasocostrizione indotta dalla medetomidina può interferire con la pulsossimetria e la venipuntura per il prelievo di sangue e la fluidoterapia. Questo farmaco provoca un buon rilassamento della laringe, facilitando l'intubazione endotracheale. Non provoca depressione respiratoria e il recupero avviene di solito entro tre ore. Il recupero può essere accelerato dall'uso di atipamisole.

Butorfanolo(Butorfanolo) è un antagonista sintetico del recettore degli oppioidi. L'effetto analgesico è 3-5 volte maggiore di quello della morfina nell'uomo e più di 30 volte nei ratti. Nei conigli, il butorfanolo provoca analgesia e lieve sedazione, non provoca depressione respiratoria a meno che non vengano utilizzate dosi elevate. . Applicato per alleviare il dolore postoperatorio alla dose di 0,4 mg/kg per via orale ogni 4-6 ore. Diversi studi hanno dimostrato che l'uso di dosi elevate di butorfanolo provoca un effetto analgesico minore rispetto a dosi inferiori. L'emivita di eliminazione del butorfanolo nei conigli alla dose di 0,5 mg/kg è di 1,64 ore dopo la somministrazione endovenosa e di 3,16 ore dopo la somministrazione sottocutanea. Il butorfanolo può essere utilizzato per invertire gli effetti depressivi delle vie respiratorie dei μ-agonisti come il fentanil, la morfina e la pefidina. Il butorfanolo (0,05 mg/kg SC o IM) è usato in combinazione con medetomidina e ketamina per l'anestesia chirurgica. Può anche essere usato in combinazione con acepromazina per la sedazione . Questa combinazione provoca vasodilatazione, che facilita il prelievo di sangue e le iniezioni endovenose.

Propofol(Propofol) è un farmaco ipnotico a breve durata d'azione senza alcuna somiglianza con i farmaci per l'anestesia generale, il meccanismo d'azione non è chiaro . Come farmaco utilizzato per l'induzione dell'anestesia, presenta molti vantaggi tra cui un profondo effetto ipnotico e ampiezza terapeutica, un rapido inizio d'azione e un rapido recupero. Le dosi ripetute non si accumulano e il propofol può essere utilizzato per mantenere l'anestesia mediante infusione continua. Baumgartner CM et al. (2009) a questo scopo hanno utilizzato il propofol alla dose di 4,0-8,0 mg/kg per via endovenosa, per mantenere l'anestesia di 1,2-1,3 mg/kg/min . Una dose di 5-14 mg/kg consente a un anestesista esperto di avere tempo sufficiente per eseguire l'intubazione. Dopo la somministrazione, è possibile l'apnea a breve termine e, quando si utilizzano dosi elevate, è possibile l'arresto respiratorio.

Studi di Dikmen B. et al. (2010) hanno mostrato che l'uso del propofol è preferibile a quello della ketamina negli animali con insufficienza renale. . ZhuT et al. (2008) hanno scoperto che il propofol migliora il flusso sanguigno epatico . Secondo Fudickar A. et al. (2009) la somministrazione di propofol provoca conseguenze negative come bradicardia acuta, asistolia, iperlipemia e acidosi metabolica, rabdomiolisi e mioglobinuria, che sono descritte come sindrome da infusione di propofol (PRIS). Il propofol non è raccomandato per l'anestesia a lungo termine nei conigli. Negli esperimenti di Chen WH et al. (2006) il propofol ha avuto un effetto diretto sul cuore dei conigli, provocando una forte diminuzione della pressione sanguigna e bradicardia.

Ketamina(Ketamina) è un farmaco dissociativo che viene utilizzato come unico farmaco per l'induzione nell'anestesia o in combinazione con altri farmaci per l'induzione e il mantenimento dell'anestesia. La ketamina ha un effetto simpaticomimetico che aumenta la frequenza cardiaca, la gittata cardiaca e la pressione sanguigna. La somministrazione intramuscolare di ketamina alla dose di 40 mg/kg dopo 6,0 +/- 0,5 minuti ha causato l'anestesia nei conigli per una durata di 36,0 +/- 0,9 minuti. La somministrazione intramuscolare preliminare di vitamina C a dosi di 30, 60 e 240 mg/kg ha ridotto il tempo di induzione in anestesia e ha prolungato l'anestesia a 5,0 +/- 0,06 e 37,0 +/- 0,7; 4,0 +/- 0,5 e 39,0 +/- 0,6; 2,0 +/- 2,3 e 44,0 +/- 0,8 minuti rispettivamente .

Gli studi hanno dimostrato che l'uso di ketamina alla dose di 10 mg/kg per via endovenosa nei conigli con lesione del midollo spinale lo protegge dall'ischemia e previene una diminuzione dei livelli di antiossidanti. .

La ketamina non elimina i riflessi oculari, laringei e di deglutizione. Lo scarso rilassamento muscolare rende la ketamina inadatta all'uso come agente singolo per l'anestesia prima dell'intervento chirurgico, viene utilizzata in combinazione con xilazina o altri farmaci. Le combinazioni di ketamina/diazepam e ketamina/acepromazina aumentano la pressione intraoculare nei conigli.

Tiletamina/zolazepam(tiletamina / zolazepame) - tiletamina - un anestetico iniettabile, chimicamente simile alla ketamina, zolazepam - un debole tranquillante diazepinico. L'azione farmacologica del farmaco combinato è simile a quella della ketamina e del diazepam. L'idoneità della tiletamina/zolazepam per l'anestesia del coniglio è stata studiata da Brammer DW et al. (1991). La somministrazione intramuscolare di 32 e 64 mg/kg del farmaco non ha causato anestesia e ha portato a un effetto nefrotossico con lo sviluppo di insufficienza renale entro 5 giorni. I ricercatori hanno concluso che questo farmaco è controindicato nei conigli. . La nefrotossicità della tiletamina/zolazepam nei conigli è stata anche stabilita nello studio Doerning BJ. et al. (1992). L'incapacità di tiletamina/zolazepam di indurre l'anestesia nei conigli è di Dupras J. et al. (2001) . Allo stesso tempo, è necessario tenere conto dell'impossibilità dell'uso legale di molte droghe utilizzate nel mondo nel nostro Paese. Se la clinica veterinaria non è attrezzata per utilizzare l'anestesia per inalazione e non è autorizzata all'uso della ketamina, la tiletamina/zolazepam è uno dei pochi farmaci di scelta e deve essere combinato con altri farmaci.

Ketamina e xilazina.

Per procedure minimamente invasive di durata non superiore a 30-40 minuti, la ketamina alla dose di 35 mg/kg miscelata con xilazina 5 mg/kg viene somministrata per via intramuscolare o sottocutanea . Una volta anestetizzato, il coniglio può essere intubato e, se necessario, collegato a un ventilatore. Il mantenimento dell'anestesia fino a 3 ore è fornito dalla somministrazione endovenosa di una miscela di ketamina / xilazina (10 + 2 mg / kg).

Ketamina, xilazina e acepromazina.

Hobbs BA. et al. (1991) hanno scoperto che la combinazione di ketamina/xilazina con acepromazina è preferibile se è necessaria un'operazione lunga, nel loro studio il periodo di anestesia era di 60-120 minuti. Ma questa combinazione, somministrata per via intramuscolare, ha causato infiammazione perineurale e fibrosi in 4 conigli su 6 in uno studio del 1999 di Vachon P. .

medetomidina e ketamina.

Una miscela di medetomidina/ketamina alla dose di 0,35 mg/kg + 5 mg/kg per via endovenosa fornisce un'anestesia chirurgica per almeno 35 minuti. La somministrazione endovenosa di atipamezolo interrompe l'azione di questi farmaci. Studi sui conigli (Kim MS et al. 2004) hanno dimostrato che una dose uguale o doppia di atipamisolo è ottimale per l'inversione dell'anestesia. .

Ketamina, medetomidina e isoflurano.

La ketamina alla dose di 15 mg/kg e la medetomidina 0,25-0,5 mg/kg per via sottocutanea o intramuscolare in combinazione con isoflurano 1,5-2,0% forniscono un grado sufficiente di anestesia per l'orchiectomia e l'ovariectomia. L'iniezione sottocutanea è più facile da tollerare, ma dopo l'iniezione intramuscolare, l'induzione in anestesia è più veloce. L'atipamezolo è un efficace antagonista, alla dose di 0,5-1,0 mg/kg, agisce più velocemente se somministrato per via intramuscolare rispetto a quello sottocutaneo, accelera il recupero del coniglio.

Ketamina e xilazina con butorfanolo.

In uno studio di Marini RP et al. (1992) ketamina/xilazina alla dose di 35 mg/kg + 5 mg/kg è stata usata insieme a butorfanolo 0,1 mg/kg. L'inclusione del butorfanolo in questa combinazione ha prolungato l'anestesia di 1,4-1,6 volte da 77 a 99 minuti. .

Medetomidina, ketamina e butorfanolo con isoflurano.

Una combinazione di medetomidina, ketamina e butorfanolo viene utilizzata per procedure brevi come il taglio degli incisivi o le radiografie. Può essere utilizzato anche per indurre l'anestesia prima dell'uso dell'anestesia per inalazione per procedure più lunghe come la rimozione di molari, incisivi, in questi casi è necessaria l'intubazione in quanto non è possibile l'uso di una maschera facciale. Raccomandiamo anche l'anestesia per inalazione durante il lavaggio del canale lacrimale.

La medetomidina alla dose di 0,2 mg/kg in combinazione con 10 mg/kg di ketamina e 0,5 mg/kg di butorfanolo viene somministrata per via sottocutanea. Ciò equivale a 0,2 ml/kg di Domitor (Pfizer), 0,1 ml/kg di ketamina e 0,05 ml/kg di Torbugesic (Fort Dodge). L'iniezione è solitamente dolorosa, l'effetto dei farmaci inizia dopo 5-10 minuti e dura circa 20 minuti. Il pieno recupero avviene in 2-4 ore.

Alla fine dell'operazione, l'effetto della medetomidina può essere rimosso da atipamezolo 1 mg/kg (0,1 ml/kg) (Antisedan (Pfizer). Il periodo di azione dell'atipamezolo è di 15-40 minuti. L'effetto analgesico della medetomidina è anche rimosso da atipamezolo.l'anestesia si verifica dopo 1-2 ore.

Tiletamina/zolazepam e xilazina.

Dupras J. et al. (2001) hanno studiato la possibilità di utilizzare la combinazione tiletamina/zolazepam alla dose di 20 mg/kg in combinazione con xilazina 3 mg/kg. se somministrato per via intramuscolare. L'introduzione all'anestesia è durata circa 3 minuti, la durata media dell'anestesia è stata di 109,4 minuti. In connessione con la capacità della xilazina di causare un'ipossia significativa, i ricercatori indicano la fornitura obbligatoria di ossigeno al coniglio.

Razina AV et al (2010) raccomandano la somministrazione intramuscolare di rometar alla dose di 4,0-6,0 mg/kg, seguita (dopo 20 minuti) dalla somministrazione intramuscolare di tiletamina/zolazepam alla dose di 5-10 mg/kg. Dopo 5 min. Dopo la somministrazione intramuscolare di Zoletil, si è verificato un completo rilassamento muscolare, il riflesso corneale e la sensibilità al dolore erano assenti, la pupilla si è dilatata. L'anestesia è durata circa 30 minuti, dopo 1,5 ore il coniglio si è mosso in modo indipendente.

Tavolo - Farmaci e loro combinazioni raccomandati per la sedazione e l'anestesia dei conigli

Preparativi	Dose (mg/kg)	Azione	Modalità di applicazione	Durata dell'azione
acepromazina		sedazione, non provoca analgesia
acepromazina + butorfanolo		sedazione e analgesia
butorfanolo + medetomidina + ketamina		anestesia		20-30 minuti, recupero 1-4 ore
ketamina + xilazina		anestesia		30-40 minuti, recupero 1-2 ore
ketamina + xilazina + butorfanolo		anestesia		40-60 minuti recupero 1-2 ore
ketamina + xilazina + acepromazina		anestesia		25-40 minuti, recupero 1-2 ore
ketamina + acepromazina		anestesia
ketamina + medetomidina		anestesia		almeno 35 minuti
propofol		ipnotico		per mantenere l'anestesia 1,2-1,3 mg / kg / min
acepromazina + butorfanolo + propofol		sedazione e analgesia		per mantenere l'anestesia propofol 1,2-1,3 mg / kg / min
tiletamina/zolazepam + xilazina		anestesia
xilazina + tiletamina/zolazepam		anestesia		30 min, recupero 1,5 ore

Pertanto, i farmaci attualmente esistenti e la possibilità di utilizzarli in varie combinazioni consentono, nella maggior parte dei casi, di scegliere il metodo di anestesia in base alle condizioni del coniglio, alla natura e alla durata dell'operazione pianificata. In questo caso, l'attrezzatura della clinica veterinaria e l'esperienza del medico svolgono un ruolo significativo.

Candidato di scienze veterinarie, professore associato del dipartimento di malattie degli uccelli, pesci, api e animali da pelliccia, Accademia statale di medicina veterinaria di San Pietroburgo, centro di medicina veterinaria Vetus.

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