Melentiev Oleg Nikolaevich, candidat en sciences vétérinaires, vétérinaire au Centre de médecine vétérinaire Vetus.

Les caractéristiques biologiques importantes des lapins, qui les distinguent des autres animaux domestiques, doivent également être prises en compte dans la période postopératoire. Pour la récupération après anesthésie, le lapin est placé sur une litière chaude ou dans une cage chauffée avec un sol chaud (Fig. 1, 3), une température d'environ 35°C est requise. Dès que la température corporelle du lapin se stabilise et que le lapin peut s'asseoir sur ses pattes, le chauffage doit être réduit à 26-28°C, car les lapins dans cet état ne peuvent pas respirer fréquemment et sont sensibles à l'hyperthermie. L'absence d'irritants externes et des conditions environnementales confortables facilitent la récupération après l'anesthésie. Seul un lapin complètement réveillé doit être conservé à température ambiante.

Pour garder, il est préférable de choisir une pièce où il n'y a pas d'autres animaux et où leur odeur est absente. Dès que le lapin récupère suffisamment pour manger et boire, il faut lui fournir de l'eau et de la nourriture. Immédiatement après le réveil et toute la période postopératoire, il est préférable de donner du foin, de l'herbe, des carottes. Après avoir extrait les incisives, il est nécessaire de donner au lapin des aliments mous, en purée ou râpés. Du foin de bonne qualité peut aussi servir de litière pour positionner le lapin sur sa poitrine (Figure 2).

Une bonne technique opératoire, la rapidité de l'opération et un matériel de suture approprié réduisent l'inconfort dans la zone de la plaie chirurgicale, mais dans la plupart des cas, une analgésie postopératoire est nécessaire. Évaluer la douleur chez les lapins peut être difficile, car ils ne montrent pas beaucoup des signes de douleur que l'on trouve chez d'autres espèces et s'assoient tranquillement près du fond de la cage, insensibles à leur environnement. Les lapins sont extrêmement sensibles à la douleur, surtout après une chirurgie abdominale et l'ablation des incisives. La douleur et le stress stimulent le système nerveux sympathique et réduisent la motilité gastro-intestinale. Une diminution de la motilité intestinale est un déclencheur du développement d'une cascade de processus indésirables qui conduisent à la lipidose hépatique et à la mort.

Il est possible de déterminer la présence de douleur en observant l'animal, mais cela nécessite une communication étroite avec lui avant l'opération et la connaissance des caractéristiques de son comportement. Les paramètres physiologiques tels que la température corporelle, la fréquence cardiaque et la respiration changent sous l'influence de la douleur, mais pour déterminer ces paramètres, il est nécessaire de retirer le lapin de la cage, ce qui en soi peut les faire changer. Les lapins qui souffrent ne s'approchent pas de la paroi avant de la cage à la vue de la nourriture. Ils ne se toilettent pas et peuvent devenir agressifs envers les autres animaux gardés dans la même cage. La douleur dans la cavité abdominale peut se manifester par l'adoption d'une position courbée du corps et le grincement des dents. Parfois, les lapins se comportent de manière agitée, rebondissant et tournant périodiquement au fond de la cage. La conséquence de la douleur est un refus complet de se nourrir.

L'analgésie chez les animaux de laboratoire, y compris les lapins, a été largement étudiée. Un système de notation de la douleur a été développé pour déterminer l'efficacité des analgésiques, bien que des différences individuelles puissent affecter la perception de la douleur, en particulier d'intensité modérée. Les doses de médicaments nécessaires pour fournir une analgésie dépendent de l'irritant, il est donc nécessaire de surveiller le lapin et de déterminer sa réponse à l'analgésie. La douleur est une condition potentiellement mortelle chez le lapin, donc tous les lapins qui souffrent doivent recevoir une analgésie.

L'analgésie est "l'absence de sensibilité à la douleur ou de soulagement de la douleur sans perte de conscience". En réponse à la douleur et à d'autres facteurs de stress, des opioïdes endogènes sont libérés et réduisent la sensibilité à la douleur. L'inflammation ou l'hypoxie au site de la blessure entraîne la libération de substances nociceptives telles que les kinines, qui à leur tour stimulent la formation de prostaglandines.

Les analgésiques opioïdes sont des médicaments à action centrale utilisés pour les douleurs intenses, qui ont un effet spécifique sur le système nerveux central. Les effets pharmacologiques sont associés à un effet sur les récepteurs opioïdes du système nerveux central. Divers récepteurs opioïdes ont été trouvés dans le cerveau, la moelle épinière et d'autres tissus, y compris le tractus gastro-intestinal. Les opioïdes provoquent un certain effet selon le type de récepteur, et il existe des différences d'espèces dans leur action :

– les récepteurs µ- (mu) sont principalement responsables de l'analgésie supraspinale, de l'euphorie, de la dépression respiratoire et provoquent une dépendance physique chez l'homme ;
- les récepteurs k- (kappa) sont principalement responsables de l'analgésie rachidienne, du myosis et de la sédation ;
– Les récepteurs σ- (sigma) sont responsables de dysphorie (humeur maussade, grincheuse-irritable, colérique avec augmentation de l'anxiété en réponse à tout stimulus externe), d'hallucinations, d'excitation respiratoire et de divers effets vasomoteurs.

D'autres récepteurs, tels que les récepteurs δ- (delta), se trouvent dans divers tissus. Les effets sur les récepteurs µ et k sont les plus importants pour le soulagement de la douleur.
D'autres interventions, telles que la dépression respiratoire, la sédation ou les effets sur la motilité gastro-intestinale, peuvent être bénéfiques ou non selon la situation dans laquelle ces médicaments sont utilisés.

Chez les lapins, les analgésiques narcotiques sont utilisés pour fournir une analgésie et, dans certains cas, une anesthésie. Ils peuvent également être utilisés après l'anesthésie pour prolonger l'effet analgésique. D'autre part, les analgésiques narcotiques provoquent une dépression respiratoire et mentale, une hypothermie et une bradycardie chez le lapin.

La buprénorphine est un puissant analgésique à longue durée d'action, agoniste partiel des opioïdes. Chez les lapins, il est utilisé pour l'analgésie à long terme pour soulager la douleur aiguë ou chronique dans les organes internes à une dose de 0,02 à 0,05 mg / kg par voie orale ou intramusculaire toutes les 6 à 12 heures; 0,5 mg/kg par voie rectale toutes les 12 heures. La buprénorphine est également utilisée pour prévenir les effets dépresseurs respiratoires du fentanyl après une intervention chirurgicale lorsqu'une combinaison de fentanyl/fluanisone et de benzodiazépines est utilisée pour l'anesthésie.

Le butorphanol est un antagoniste synthétique des récepteurs opioïdes. Chez les lapins, le butorphanol procure une analgésie et une légère sédation, et ne provoque pas de dépression respiratoire à moins que des doses élevées ne soient utilisées. Appliqué pour soulager la douleur postopératoire à une dose de 0,4 mg/kg par voie orale toutes les 4 à 6 heures.

Des études ont montré que l'utilisation de doses élevées de butorphanol provoque un effet analgésique plus faible que des doses plus faibles. La demi-vie d'élimination du butorphanol chez le lapin à la dose de 0,5 mg/kg est de 1,64 heures après administration intraveineuse et de 3,16 heures après administration sous-cutanée. Le butorphanol peut être utilisé pour inverser les effets dépresseurs respiratoires des µ-agonistes tels que le fentanyl, la morphine et la péfidine.

Le tramadol est un analgésique opioïde dérivé du cyclohexanol. Agoniste non sélectif des récepteurs µ, δ et k dans le SNC. C'est un racémate d'isomères (+) et (-) (50 % chacun), qui sont impliqués dans les effets analgésiques de diverses manières. L'isomère (+) est un agoniste pur des récepteurs opioïdes, a un faible tropisme et n'a pas de sélectivité prononcée pour divers sous-types de récepteurs. L'isomère (-), inhibant la captation neuronale de la noradrénaline, active les influences noradrénergiques descendantes. De ce fait, la transmission des impulsions douloureuses à la substance gélatineuse de la moelle épinière est perturbée, ce qui provoque un effet sédatif. Aux doses thérapeutiques, il ne déprime pratiquement pas la respiration. Il a un effet antitussif. Plus de 80 % du tramadol est excrété chez le lapin par les reins. Il n'y a pas eu d'effets secondaires après administration orale de tramadol à la dose de 11 mg/kg. La demi-vie était de 145,4 ± 81,0 minutes ; la concentration maximale dans le plasma sanguin est de 135,3 +/- 89,1 ng/ml. La dose recommandée pour les lapins est de 2,0 à 4,0 mg/kg toutes les 12 heures.

Fentanyl/fluanisone (Fentanyl/fluanisone). Le fentanyl est un puissant agoniste opioïde qui agit principalement sur le récepteur µ et provoque une analgésie, une dépression respiratoire et, chez l'homme, une euphorie. La force de l'action analgésique est 20 à 100 fois supérieure à celle de la morphine. Son effet analgésique est renforcé par la fluanisone, qui supprime également l'effet dépresseur sur la respiration. Selon de nombreux auteurs, c'est le meilleur médicament utilisé chez le lapin pour la sédation et l'anesthésie, l'analgésie profonde dure 3 heures après l'administration. L'association fentanyl/fluanisone est utilisée pour la prémédication, la sédation et l'analgésie forte ou, en association avec le midazolam, pour l'anesthésie.

Dans certains cas, les anti-inflammatoires non stéroïdiens (AINS), qui inhibent la synthèse de la cyclooxygénase, des prostaglandines et des substances similaires, peuvent être une alternative aux analgésiques opioïdes. La cyclooxygénase est une enzyme qui favorise la formation de prostaglandines à partir de l'acide arachidonique dans les membranes cellulaires. Il existe deux isomères de la cyclooxygénase : COX-1 et COX-2. Tous les AINS ont des propriétés antalgiques, antipyrétiques et anti-inflammatoires. Leur effet toxique potentiel est associé aux isomères de la cyclooxygénase. COX-1 a un certain nombre de propriétés physiologiques, et on pense que l'inhibition de COX-1 est responsable de la plupart des effets toxiques des AINS. La COX-2 est produite aux sites d'inflammation par l'action de médiateurs inflammatoires.
Le carprofène inhibe moins la cyclooxygénase et est donc moins toxique, il a un mécanisme d'action différent. La structure de la molécule affecte également l'action pharmacologique, notamment des AINS appartenant au sous-groupe de l'acide 2-arylpropionique (dérivés de l'acide propionique : carprofène, kétoprofène et védaprofène). Certaines espèces animales ont des métabolismes différents. En général, l'intervalle d'utilisation des AINS chez les nouveau-nés et les animaux âgés doit être plus long pour réduire la toxicité.

La suppression de la régulation normale par les prostaglandines peut conduire à une perfusion rénale insuffisante chez les patients hypotendus et à une insuffisance rénale aiguë. Cela se produit pendant l'anesthésie, surtout s'il y a une perte de sang importante, alors la pression artérielle doit être maintenue en introduisant la quantité requise de solutions. Il est conseillé de faire une pause de 24 heures entre l'utilisation d'AINS de différents types.
Les AINS peuvent être utilisés pour l'analgésie postopératoire et le traitement de l'arthrose chronique. L'effet des AINS sur la synthèse des prostaglandines chez le lapin est significatif. Les prostaglandines stimulent la libération de matières fécales molles chez les lapins en inhibant la motilité intestinale proximale et en stimulant la motilité distale.

L'aspirine (aspirine) inhibe la cyclooxygénase, ce qui entraîne une diminution de la synthèse des prostaglandines et des thromboxants, réduit l'agrégation plaquettaire et l'inflammation. L'aspirine est un analgésique efficace pour les lapins, elle est utilisée comme premiers soins, c'est pourquoi de nombreux propriétaires de lapins en ont à la maison. La dose orale est de 100 mg/kg. La concentration maximale dans le sérum sanguin chez le lapin est atteinte après 1 à 2 heures. L'aspirine peut provoquer une diminution des plaquettes et une tendance à saigner chez les lapins de laboratoire. Les propriétés analgésiques sont plus faibles par rapport à certains autres AINS tels que le carprofène et la flunixine.

Le carprofène est un faible inhibiteur de la cyclooxygénase avec un faible rapport COX-1:COX-2 et une toxicité minimale. Le carprofène, du fait de sa disponibilité, peut être prescrit après chirurgie à tous les patients. Bien qu'il puisse être pris par voie orale (1,5 mg/kg 2 fois/jour), des études ont montré qu'il est préférable de l'administrer par voie sous-cutanée ou intraveineuse (2-4 mg/kg 1 fois/jour).
Lorsqu'il est administré par voie sous-cutanée, il peut y avoir des effets indésirables associés à la pénétration possible du médicament dans le derme. Pour réduire le nombre de complications, il est nécessaire de s'assurer que le médicament a pénétré dans le tissu sous-cutané, et non dans le derme, et de masser la zone d'injection après l'injection. Le carprofène est particulièrement indiqué pour les douleurs aiguës après fractures et blessures.

La flunixine est un puissant inhibiteur de la cyclooxygénase qui a été utilisé avec succès comme agent anti-inflammatoire chez les vaches et les chevaux. Les fabricants ne recommandent pas son utilisation tant que le patient n'a pas complètement récupéré de l'anesthésie générale, car cet AINS peut entraîner une diminution du débit sanguin rénal. Il ne peut pas non plus être co-administré avec d'autres médicaments néphrotoxiques tels que la gentamicine. La flunixine peut être utilisée comme analgésique et anti-inflammatoire chez le lapin à la dose de 1,1 mg/kg 2 fois par jour, par voie sous-cutanée.
La possibilité d'utiliser des inhibiteurs de la cyclooxygénase pour le traitement de l'entérotoxémie est intéressante. Elmas M. et al. (2008) ont utilisé avec succès la flunixine 2,2 mg/kg et l'enrofloxacine 5 mg/kg par voie intraveineuse à cette fin.

Kétoprofène (Kétoprofène). Le kétoprofène a été décrit chez les petits mammifères, y compris les lapins, comme une alternative au carprofène et au méloxicam. Appliquer par voie orale, deux fois par jour, à une dose de 1 à 3 mg/kg.

Le méloxicam est un AINS avec un faible rapport COX-1:COX-2. Il a un fort effet anti-arthritique et peu de potentiel à provoquer une irritation gastrique chez les animaux par rapport aux autres AINS. Des études de sa toxicité ont montré une bonne tolérance et une excellente résistance dans les tissus de lapin.

La libération de ce médicament par l'estomac et le transport intestinal ne sont pas affectés par les doses thérapeutiques de méloxicam, à l'exception d'un effet à court terme sur l'acidité gastrique. Des doses significativement plus élevées que celles recommandées pour l'action anti-inflammatoire n'ont pas affecté l'excrétion d'eau, d'électrolytes et de créatinine pendant toute la période d'observation. Après une administration orale unique de méloxicam à une dose de 0,3 et 1,5 mg/kg, la concentration plasmatique maximale du médicament a été atteinte après 6 à 8 heures et s'élevait à 0,14 et 3,0 μg/ml, respectivement, diminuant à un niveau indétectable dans 24 heures. Avec une utilisation de cinq jours du médicament, aucun cumul n'a été observé, pour atteindre la concentration thérapeutique requise lorsqu'il est utilisé une fois par jour, des doses supérieures à 0,3 mg / kg sont nécessaires. Les lapins peuvent recevoir du miel de fleurs pour une analgésie à long terme dans des conditions douloureuses telles que l'arthrite ou la spondylose à une dose de 0,1 à 0,2 mg/kg toutes les 12 heures.

Carpenter J.W. et al. (2009), étudiant la pharmacocinétique du méloxicam chez le lapin, ont constaté que l'administration orale du médicament à une dose de 0,2 à 0,3 mg/kg une fois par jour était suffisante et n'ont trouvé aucun effet secondaire après l'avoir utilisé pendant 10 jours. La concentration maximale du médicament dans le plasma le premier jour était de 0,17 mcg/kg, le 10e jour - 0,24 mcg/kg. De plus, Salhab A.S. et al. (2001) ont découvert que le méloxicam à une dose de 20 mg/kg par voie intrapéritonéale inhibait l'ovulation chez les lapins lorsqu'il était administré 2 et 5 heures après le coït.

Les AINS sont sélectionnés en fonction de leur activité analgésique et anti-inflammatoire. Des médicaments tels que la flunixine et le carprofène procurent des effets analgésiques comparables aux analgésiques opioïdes. Leach M.C. et al. (2009) ont étudié l'effet de la douleur et du stress sur le comportement des lapines après ovariohystérectomie et la possibilité d'utiliser le méloxicam en période postopératoire. Il a été constaté que pour une analgésie suffisante en cas de lésion des tissus mous, le lapin a besoin de fortes doses de médicament (dose initiale - 1 mg / kg, ultérieure - 0,5 mg / kg / jour) ou d'une combinaison de méloxicam avec des analgésiques opioïdes.
Cooper C.S. et al. (2009) ont comparé les effets sur l'appétit chez les lapins du méloxicam et de la buprénorphine pendant 7 jours après la chirurgie, la numération fécale et urinaire, le poids corporel et les niveaux d'analgésie et ont conclu que le méloxicam est une bonne alternative à la buprénorphine et, lorsqu'il est utilisé, le risque de l'anorexie et la stase gastro-intestinale sont minimes.

Pour assurer l'adéquation de l'anesthésie, les analgésiques opioïdes et les AINS peuvent être utilisés simultanément avec un risque minimal d'effets secondaires.
Lorsqu'un lapin sort de l'hôpital, le propriétaire est chargé de surveiller de près le comportement de l'animal, sa consommation de nourriture et ses excréments solides. Le lapin doit être amené pour un nouvel examen s'il n'a pas mangé depuis plus de 24 heures. Si le propriétaire du lapin ne sait pas si le lapin mange ou a un appétit réduit, l'animal doit être hospitalisé pour une observation plus approfondie. Un lapin qui ne commence pas à manger après la chirurgie a besoin d'un traitement pour prévenir ou corriger la stase gastro-intestinale et réévaluer les prescriptions post-opératoires.

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Dans le sang, le nombre d'érythrocytes, leur teneur en hémoglobine, la RSE, l'indice de couleur, le nombre de leucocytes ont été déterminés et le leucogramme a été étudié selon les méthodes généralement acceptées en hématologie.

Le sang pour obtenir le sérum a été prélevé de la veine jugulaire dans des tubes à essai secs avant l'administration des médicaments, 24 heures, 1, 3, 7 et 14 jours après l'expérience.

Dans le sérum sanguin, les éléments suivants ont été déterminés: la quantité de glucose, les protéines totales, l'activité de l'AST et de l'ALT, la concentration de la bilirubine totale, de l'urée, de la créatinine à l'aide d'un analyseur biochimique semi-automatique BioChem SA.

Les études électrocardiographiques ont été réalisées à l'aide d'un électrocardiographe EK 14 T, l'enregistrement a été effectué dans la deuxième dérivation ; l'évaluation a été réalisée selon une méthode généralement admise en cardiologie.

L'orchidectomie chez le lapin a été réalisée de manière fermée.

L'échographie des organes abdominaux des lapins a été réalisée à l'aide d'un échographe vétérinaire portable PU 2200 Vet avant l'administration de médicaments, 10 minutes après l'administration d'une solution à 2% de chlorhydrate de xylazine, Zoletil, ainsi que leur association après 10, 30, 60, 90, 120, 150 et 180 minutes selon la méthode développée par nos soins.

L'image morphologique des organes abdominaux a été évaluée lors de l'autopsie de lapins à différentes périodes de l'étude : sans l'utilisation de Rometar et de Zoletil (groupe témoin), 30 minutes après l'administration de ces médicaments, 1 jour après la chirurgie et 7 jours après anesthésie générale.

Pour les études histologiques, des morceaux d'organes ont été fixés dans du formol neutre à 10%, des coupes histologiques ont été préparées sur un microtome à traîneau de 5 à 7 µm d'épaisseur, colorées à l'hématoxyline et à l'éosine.

Le traitement statistique du matériel numérique des résultats de l'étude a été effectué par la méthode des statistiques de variation à l'aide du progiciel Microsoft Excel XP, en dérivant M, m, le coefficient de fiabilité P, en tenant compte du critère de Student.

Le degré de fiabilité des indicateurs par rapport à ceux d'avant l'expérience marqués d'un * était inférieur à 0,05.

3. RÉSULTATS DE LA RECHERCHE

3.1. Sélection des médicaments et évaluation du degré de général

anesthésie chez le lapin

Les études menées ont permis de déterminer la variante la plus optimale de l'anesthésie générale pour les lapins. Dans tous les cas, une prémédication par une solution à 2 % de chlorhydrate de xylazine s'est avérée justifiée.

L'introduction du rometar s'est accompagnée de changements caractéristiques des médicaments de ce groupe. 5 à 10 minutes après l'administration du médicament, les animaux ont baissé la tête, une sédation et une diminution de la sensibilité à la douleur ont été observées, cependant, les lapins ont montré une résistance assez active à certaines manipulations associées à la fixation en position latérale.

L'administration par jet intraveineux d'une émulsion aqueuse de propofol à 1% a provoqué une relaxation prononcée des muscles des extrémités, mais la sensibilité à la douleur est restée, ce qui a exclu la possibilité d'interventions chirurgicales.

L'inhalation d'éther a provoqué l'absence de réflexes et de sensibilité à la douleur dans les 10 minutes, le tonus des muscles des mâchoires et des paupières - 15 minutes. Après 30 minutes, les lapins ont essayé de se lever et après 40 minutes, ils ont pu changer indépendamment la position du corps dans l'espace.

L'utilisation de Zoletil-50 comme mononarcose a fourni une relaxation musculaire instantanée et l'absence de sensibilité à la douleur dans les 5 minutes. Après 30 minutes, l'activité motrice des lapins a été restaurée et après 1 heure, ils pouvaient se déplacer de manière autonome.

Dans le contexte de la sédation avec Rometar, l'introduction de Zoletil-50 par voie intramusculaire et intraveineuse a permis d'atteindre le stade chirurgical de l'anesthésie. 25 à 30 minutes après l'administration intramusculaire et 30 à 35 minutes après l'administration intraveineuse, la sensibilité à la douleur a été restaurée, après 45 à 60 minutes, les lapins ont essayé de se lever et pouvaient se déplacer indépendamment après 90 minutes.

3.2. Influence des antidouleurs et de leurs associations sur l'état clinique, les paramètres sanguins morphologiques, biochimiques et l'activité cardiaque des lapins

3.2.1. L'effet du rometar et de l'éther sur le corps des lapins

La prémédication au rometar a provoqué une légère augmentation de la température corporelle chez les lapins du premier sous-groupe de ce groupe, qui a été remplacée par une diminution de la valeur de cet indicateur après l'utilisation d'éther et a persisté pendant trois heures.

10 minutes après l'administration de rometar, il y a eu une diminution du pouls et de la fréquence respiratoire, qui, 10 minutes après l'utilisation d'éther pour l'anesthésie, ont été remplacées par une augmentation, mais déjà 30 minutes après, il y avait une tendance à diminuer, et un jour plus tard, les valeurs de la fréquence cardiaque et des mouvements respiratoires se rapprochaient de l'original.

Dans la composition morphologique du sang des lapins de ce sous-groupe, en une heure, il y avait une tendance à réduire le nombre d'érythrocytes et leur teneur en hémoglobine. Après sédation au rometar, la teneur en leucocytes a légèrement augmenté, ce qui a été remplacé par une diminution de leur nombre après l'utilisation d'éther. Trois heures après l'anesthésie, une forte augmentation du nombre de leucocytes a été enregistrée et ce n'est que le septième jour que cet indicateur a retrouvé son niveau initial (Fig. 1, 2).

Les modifications des leucogrammes concernaient principalement le nombre de formes segmentées et piquées de neutrophiles et de lymphocytes.

10 minutes après l'administration intramusculaire de rometar, une tendance à l'augmentation du pourcentage de neutrophiles segmentés est apparue, qui a persisté pendant trois heures même après inhalation d'éther. Les changements dans le nombre de lymphocytes étaient similaires aux changements dans les neutrophiles segmentés, mais avec le signe opposé (Fig. 3, 4).

Dans la composition biochimique du sérum sanguin, il y avait une diminution de l'activité du glucose, de l'ALT et de l'AST, une augmentation de la concentration de bilirubine totale, d'urée, de créatinine et de protéines totales. Presque tous les indicateurs ont atteint le niveau initial après 14 jours (tableau 2).

Après l'introduction du rometar, il y a eu une diminution de la fréquence cardiaque, un allongement des périodes systolique et diastolique et une diminution significative de l'amplitude de l'onde R. L'inhalation de l'éther a entraîné une diminution de la durée des intervalles Q-T et R-R , une déformation de l'onde P qui n'a pas précédé tout complexe QRS, une augmentation de l'amplitude de l'onde T, qui est devenue négative, une diminution de l'amplitude de l'onde R.

Après 24 heures, les paramètres de l'électrocardiogramme ne différaient pratiquement pas des paramètres initiaux.

3.2.2. L'effet du zoletil sur le corps des lapins

Lors de l'étude des indicateurs caractérisant l'état clinique des lapins expérimentaux du deuxième sous-groupe du premier groupe, une diminution de la température corporelle, une diminution de la fréquence cardiaque et des mouvements respiratoires, qui peuvent être retrouvées dans les 3 heures suivant l'administration du médicament et atteignant le niveau initial après 1 jour, ont été établis.

Après administration intraveineuse de Zoletil, une diminution du nombre d'érythrocytes et de leur teneur en hémoglobine a été observée. Un jour plus tard, ces indicateurs ne différaient pratiquement pas des données obtenues avant l'administration du médicament. Ces changements se sont accompagnés d'une augmentation du nombre de leucocytes, qui a persisté pendant trois jours (Fig. 1, 2).

Dans les leucogrammes, une augmentation du pourcentage de neutrophiles poignardés a été notée déjà une heure après l'introduction des animaux en anesthésie et est restée à ce niveau pendant trois jours. Une heure après le début de l'anesthésie, le nombre de neutrophiles segmentés a augmenté, ce qui, comme chez les animaux du sous-groupe précédent, a entraîné une diminution du nombre de lymphocytes et, inversement, au même moment de l'étude (Fig. 3 , 4).

Dans les trois jours suivant l'administration intraveineuse de Zoletil, une diminution des taux de glucose et une augmentation de la quantité de protéines totales dans le sérum sanguin ont été observées.

10 minutes après l'administration de Zoletil, il y a eu une légère diminution de la fréquence cardiaque, une diminution de l'amplitude de l'onde S dans certains cycles. Une heure plus tard, dans des cycles séparés, une extrasystole a été notée, une augmentation de l'amplitude des ondes P et R et l'onde T est devenue négative. La durée des intervalles R-R et Q-T a augmenté.

Un jour plus tard, les valeurs de l'électrocardiogramme se rapprochaient des valeurs initiales.

3.2.3. Influence du rometar et du zoletil sur le corps des lapins

Après l'introduction de Zoletil dans le contexte de la sédation avec du rometar chez le lapin, une diminution de la température corporelle a commencé et après trois heures, elle a atteint un niveau minimum (35,2 ± 0,36 ° C).

Le ralentissement du pouls observé après l'administration de rometar a été remplacé par une normalisation à court terme après l'administration de zoletil, après quoi une bradycardie a de nouveau été observée. Les changements décrits s'accompagnaient d'une diminution de la respiration. Un jour plus tard, les valeurs de ces indicateurs ne différaient pratiquement pas de celles pré-expérimentales.

Une tendance à la diminution du nombre d'érythrocytes et de leur teneur en hémoglobine a été observée dans l'heure suivant l'administration de zoletil et a été remplacée par une récupération rapide du nombre d'érythrocytes, qui après trois heures ne différait pas significativement des données obtenues avant l'administration de rometar et de zoletil (Fig. 1).

Dans l'image du sang blanc, les changements étaient similaires à ceux des lapins du premier sous-groupe de ce groupe, mais avec un degré de gravité moindre.

Le nombre de leucocytes a augmenté 10 minutes après la prémédication et après l'administration de Zoletil-50, il a diminué dans les 30 minutes. Trois heures plus tard, une augmentation du contenu en leucocytes a été notée, qui a été remplacée par une diminution et atteignant une valeur minimale le troisième jour, puis il y avait une tendance à l'augmenter (Fig. 2).

Les modifications des leucogrammes étaient similaires à celles des animaux du deuxième sous-groupe, mais moins prononcées. 10 minutes après l'application de Zoletil-50, de jeunes neutrophiles sont apparus dans le sang, qui à d'autres moments de l'étude n'ont pas été retrouvés dans le sang périphérique des lapins de ce sous-groupe. Le pourcentage de formes stab de neutrophiles a diminué 10 minutes après la prémédication. 10 minutes après avoir atteint le stade chirurgical de l'anesthésie, une augmentation du pourcentage de neutrophiles poignardés a été notée, qui a duré 24 heures et ce n'est que le septième jour que leur nombre s'est approché du nombre initial.

Le nombre de neutrophiles segmentés 10 minutes après l'administration

Figure 1 - Modifications du nombre d'érythrocytes dans Figure 2 - Modifications du nombre de leucocytes dans

lapins du deuxième groupe, 1012/l lapins du deuxième groupe, 109/l

Figure 3 - Variations en pourcentage Figure 4 - Variations en pourcentage

neutrophiles segmentés chez les lapins lymphocytes chez les lapins du deuxième groupe

deuxième groupe

Tableau 2 - Modifications des paramètres biochimiques du sérum sanguin des lapins

numéro de sous-groupe	Dates de recherche	Glucose, mmol/l	Urée, mmol/l	Bilirubine, µmol/l	Al AT, E/l	Ac AT, E/l	Protéines totales, g/l	Créatinine, µmol/l
1	Avant l'administration du médicament	6,15±0,86	4,95±1,09	2,06±0,61	55,6±2,88	16,2±3,96	64,31±3,29	122,8±8,35
	Un jour	3,69±0,51*	9,41±1,88*	2,84±1,00	41,6±7,02*	13,2±2,77	73,02±5,21*	204,6±13,72*
	3 nuits	3,07±0,86*	8,08±1,55*	3,87±0,72*	49.0±5.43	16.2±6.22	72,98±5,24*	218,8±15,04*
	7 nuits	3,62±0,63*	6,37±1,42	7,23±1,84*	51.0±5.52	16,8±5,59	70,14±2,64*	169,6±8,88*
	14 jours	6.18±0.70	4,98±0,88	2,13±0,55	55,2±2,77	16,2±3,63	64,28±3,42	123,6±5,94
2	Avant l'administration du médicament	6,47±0,67	4,73±0,54	2,22±0,77	49,6±3,05	15,2±3,96	63,5±6,34	117,4±10,95
	Un jour	3,13±0,47*	2,82±0,43*	3,99±0,63*	64,6±7,86*	11.8±3.7	73,3±9,31	140,86±9,65*
	3 nuits	1,99±0,10*	4,95±0,78	0,83±0,44*	49,8±6,87	60,8±16,02*	81.03±8.8*	65,8±4,87*
	7 nuits	3,18±0,31*	5,31±0,59	2,5±0,84	50,4±4,34	46,4±10,88*	77,04±8,46*	104.00±11.60
	14 jours	6,44±0,59	4,76±0,47	2,21±0,71	50.00±2.35	15.60±3.36	63,3±4,9	117,8±9,65
3	Avant l'administration du médicament	5,44±0,66	7.08±2.45	2,71±1,29	57,6±11,74	14,2±2,28	59,54±2,18	110,0±23,8
	Un jour	3,31±0,32*	4,88±0,77	3,35±1,51	25.00±12.88*	35,6±6,19*	71.89±6.00*	171,6±25,60*
	3 nuits	3,44±1,22*	5,97±2,52	2,68±1,17	44.00±16.72	17,8±2,59	68,45±5,01*	155.00±35.04
	7 nuits	4,75±1,17	8.80±1.11	4,61±2,39	50,6±15,22	14,6±3,36	76,51±2,11*	141,2±20,71
	14 jours	5,46±0,74	7.14±2.39	2,69±1,18	57,8±11,39	14,2±2,39	59,74±3,15	116,8±19,92

La castration est une solution au problème de fertilité des lapins. Qui ne connaît pas l'expression courante « se reproduire comme des lapins » ! Cet animal est devenu pratiquement un symbole de fertilité, qui, bien sûr, ne doit pas être oublié par les propriétaires d'animaux à oreilles décoratifs, ayant une version décorative d'animaux de compagnie.

Pour éviter de nombreux événements indésirables, les experts recommandent leur stérilisation ou leur castration en temps opportun. Qu'est-ce que cela menace ou, au contraire, ne menace pas le lapin et faut-il le faire ?

Cette opération peut être soumise à la fois à la femme et à l'homme. Dans le premier cas, les lapins attachent les trompes de Fallope, créant artificiellement leur obstruction, et les lapins "mâles" - les canaux séminaux ou en retirent un fragment.

C'est-à-dire en gros aucune interférence grossière dans le corps du lapin ne se produit: les organes génitaux ne sont pas retirés, ils fonctionnent, comme on dit, en mode normal, en continuant à produire des hormones. L'instinct sexuel chez les individus n'est pas perturbé, ne diminue pas, ils sont capables de s'accoupler. Mais l'objectif de la procédure elle-même - empêcher les lapins de se multiplier de manière incontrôlable - a été atteint.

Après la stérilisation, l'animal peut perdre du poids ou devenir agressif. La stérilisation peut-elle affecter d'une manière ou d'une autre le corps du lapin ? En raison du besoin naturel de procréer, et même avec un système reproducteur fonctionnant normalement, les lapines stérilisées sont sujettes à d'importants dérèglements hormonaux.

Le corps de l'animal est exposé à un stress qui peut entraîner de graves problèmes de santé, notamment des problèmes au niveau de l'appareil génito-urinaire. Un animal de compagnie pauvre peut, pour ainsi dire, perdre du poids sans raison apparente, refuser de manger, des éléments d'agressivité apparaissent dans son comportement même vis-à-vis des propriétaires.

Castration : avantages et inconvénients

La castration est une opération visant à enlever complètement les organes reproducteurs, ceux. à la suite d'elle, les lapins perdent leurs ovaires (castration partielle) ou eux avec l'utérus (complet), et les deux testicules sont retirés des mâles.

Si la stérilisation n'élimine que la fonction de reproduction avec toutes les conséquences hormonales qui en découlent, alors la castration des problèmes hormonaux dans le corps du lapin ne crée pas.

Les moins

Il faut avouer qu'une telle intervention chirurgicale, aux nombreux avantages, dont nous parlerons plus bas, comporte aussi quelques moments désagréables :

• comme toute opération, c'est un traumatisme et du stress(à la fois pour l'animal et pour le propriétaire);
• dépenses en espèces;
• soins supplémentaires.

avantages

Malgré quelques "contre", les experts, répondant à la question "faut-il castrer les lapins décoratifs ?", affirment que pour les mâles à oreilles des deux sexes, la castration est la meilleure option. Pour - beaucoup d'arguments :

A quel âge faire

Il arrive souvent que la castration doive être pratiquée sur un duvet déjà d'âge moyen pour des raisons de santé. Cependant, les vétérinaires pensent qu'il est préférable de le faire lorsque le lapin est encore jeune, en bonne santé et énergique.

La stérilisation doit être effectuée lorsque l'animal a six mois. Le lapin atteint sa maturité sexuelle vers 4 mois, et en principe l'opération est déjà possible. Cependant, l'âge de 6 mois est considéré comme plus sûr.

Un indicateur pour les hommes est la descente des testicules dans le scrotum. Cela se produit également à peu près au même âge - 3,5 à 4 mois.

Ce n'est pas la peine de faire une telle opération avant : non seulement c'est techniquement plus difficile, mais c'est aussi imprévisible pour la santé du lapin.

"Docteur Aibolit" n'entreprendra pas non plus la castration d'un vieux lapin. Statistiquement, la probabilité d'échec de l'opération augmente avec l'âge. Et même un patient qui a dépassé la limite d'âge de deux ans devrait déjà être soumis à un examen approfondi avec des tests.

Si le lapin a plus de 4 ans, la probabilité de sa mort est bien supérieure à celle de son homologue de 6 à 9 mois.

Quand n'est-ce toujours pas possible ?

Si un animal est en surpoids, il ne sera pas castré jusqu'à ce qu'il revienne à la normale.

Ils feront de même en présence de certaines maladies - le patient duveteux doit d'abord être guéri.

Comment se déroule l'opération

Anesthésie. Les procédures opératoires pour les hommes et les femmes sont différentes. Chez les lapins, les testicules sont complètement enlevés. Cela peut être fait en faisant une ou deux incisions.

Dans la première variante, les deux testicules sont retirés par une incision, dans la seconde, des incisions sont pratiquées sur chacun d'eux et les organes sont prélevés séparément. Tout cela se fait sous anesthésie locale.

Les incisions traitées avec un antiseptique peuvent rester ouvertes. L'option "fermée" consiste à suturer ou à appliquer de la colle chirurgicale.

L'opération chez la femme est plus compliquée. Tous les organes reproducteurs sont retirés du lapin et une telle intervention nécessite l'utilisation d'une anesthésie. Après le retrait, les vaisseaux sanguins qui alimentaient ces organes sont également suturés et des sutures sont placées pour fermer l'incision.

Si vous êtes préoccupé par la qualité et l'effet de l'anesthésie sur l'animal opéré, vous devez «surveiller» les cliniques vétérinaires à l'avance, étudier les avis des propriétaires qui ont rencontré un tel problème et choisir un spécialiste qui possède déjà une vaste expérience dans traitement, y compris chirurgical, des lapins d'ornement.

Opération : avant et après

Avant le moment crucial, vous devez clarifier en clinique :

• à quoi votre animal sera-t-il soumis - stérilisation ou castration;
• quels tests doivent être effectués en plus ;
• quels médicaments ou dispositifs peuvent être nécessaires pendant la période postopératoire ;
• comment préparer un lapin pour la chirurgie.

Vous ne devez pas garder votre animal de compagnie pendant une demi-journée en «régime de famine». Pour un animal qui mâche constamment, c'est stressant. Il vous suffit de réduire la dose habituelle.

...Mais maintenant, toutes les manipulations nécessaires pour empêcher "l'explosion de la population" de lapins sont terminées, et vient maintenant la période cruciale - les soins postopératoires. Comment le réaliser, vous devez certainement le savoir même dans une clinique vétérinaire.

Assurez-vous de demander au médecin quel comportement peut-on attendre du lapin opéré, afin de ne pas avoir peur des "anomalies"; à quoi devraient ressembler le site d'incision et la suture postopératoire ; comment les traiter.

Vous devez être prêt à quoi dans les premières heures postopératoires, le lapin chancelle et il peut se comporter de manière très inhabituelle.

Il doit être posé sur un espace de vie propre et apporter confort, calme et boisson. Le bac doit également être propre et rempli de mastic frais (en option - avec des chutes de papier - un matériau totalement neutre).

La nourriture peut être offerte après quelques heures, mais pas autorisée à trop manger au moins pendant les trois premiers jours.

Discutez avec votre médecin de la façon de prendre soin de votre animal après la chirurgie. Surveillez l'appétit de votre animal ainsi que la miction et les selles. Si vous remarquez soudainement qu'il ne mange pas, qu'il n'a pas uriné depuis longtemps, ou qu'il n'a pas de selles, ou au contraire une diarrhée survient, c'est une raison pour contacter un spécialiste.

Le site opéré doit être examiné périodiquement. La couture doit être sèche et propre. Un lapin a souvent envie de ronger les coutures - il est nécessaire de les sécuriser d'une manière ou d'une autre, malgré le rejet actif par l'animal de toutes sortes de bandages et de colliers de protection.

Si la couture "se sent" normale, elle n'a pas besoin d'être traitée avec quoi que ce soit. Mais un anesthésiant pour un lapin, et surtout un lapin, ne ferait pas mal du tout. La douleur peut ralentir la récupération postopératoire d'un animal, interférant à la fois avec la nutrition et l'hygiène personnelle.

Malgré le fait qu'après quelques jours, le lapin aura besoin de mouvements actifs dans la pièce, ne le permettez pas pour l'instant: le site d'incision peut être blessé et blessé.

Ne vous inquiétez pas si vous remarquez un gonflement du scrotum. Si cela est observé pendant pas plus de deux semaines, il est alors considéré comme la norme.

Après la castration, les lapins ne peuvent pas être installés avec des lapinsâge "de procréer". Le fait est que chez le mâle opéré, le sperme restant dans le canal déférent conserve ses propriétés pendant longtemps, et le niveau de testostérone ne tombe pas immédiatement à "zéro", donc le lapin tentera de s'accoupler pendant encore 3-4 semaines, et la lapine peut tomber enceinte.

Prix ​​d'émission

L'opération de stérilisation ou de castration, bien sûr, est une procédure payante. Combien cela coûte varie dans différentes villes et même dans différentes cliniques. Dans les établissements vétérinaires privés, le prix est généralement plus élevé que dans les établissements publics.

Castrer un mâle est moins cher qu'une femelle. Cela peut aussi dépendre de la race des oreilles. Souvent, il est égal ou supérieur au prix du "patient". Le coût de l'intervention chirurgicale proprement dite commence à partir de 2000 roubles. Il faut ajouter le prix de l'anesthésie, des consommables, des médicaments, des compte-gouttes, ainsi que des études complémentaires - échographie, tests, écho et électrocardiogramme. Il est possible que vous deviez laisser votre animal à la clinique pendant un certain temps.

Il ne faut pas négliger ainsi des postes de dépenses tels que le transport aller-retour, une consultation préalable chez un vétérinaire et son examen final, ainsi que l'achat d'appareils de protection (pansement/collier).

Si vous êtes un heureux propriétaire d'un couple de lapins décoratifs, alors afin d'éviter le problème de la surpopulation de lapins, vous devez certainement décider à l'avance par vous-même quoi faire avec les intérêts sexuels de vos animaux de compagnie et lequel des moyens vous semblera le plus humain pour vous - stérilisation ou castration, après avoir étudié les conseils et les commentaires d'experts et de collègues par passe-temps.

En contact avec

Pourquoi les lapins sont-ils castrés ou stérilisés :
- On pense que les lapins castrés et stérilisés sont en meilleure santé et vivent donc plus longtemps. En stérilisant les lapins, vous éliminez en fait le risque de cancer des organes reproducteurs des femelles. Un mâle castré, en revanche, vivra beaucoup plus longtemps et subira moins de blessures du fait qu'il arrête d'essayer de se battre avec d'autres animaux domestiques (autres lapins, chats, etc.).
—Les lapins stérilisés et stérilisés sont plus amicaux et sociables. Ils sont plus calmes, plus affectueux, prévisibles. De plus, les lapins font beaucoup moins de pannes dans la maison (ils rongent moins les meubles et creusent des trous dans les tapis), l'agressivité diminue (tentatives de mordre, gratter, grogner contre les propriétaires, s'évader et s'enfuir). Après l'opération, ils
-Arrête de frapper. Après la castration et la stérilisation, les lapins, mâles et femelles, cessent de marquer leur territoire et apprennent beaucoup plus facilement à aller aux toilettes en un seul endroit qu'auparavant.
—Castration et stérilisation des lapins est en quelque sorte votre contribution au contrôle des naissances animales. Plus de 15 000 merveilleux animaux domestiques tels que des chats, des lapins, des chiens meurent chaque année dans notre pays (dans ce contexte, les États-Unis) de froid et de faim, abandonnés par leurs propriétaires à leur sort. De nombreux animaux meurent après avoir été relâchés dans des parcs forestiers ou simplement dans la rue, où ils sont privés de nourriture et meurent de maladies, et sont également des proies faciles pour d'autres animaux et/ou meurent en traversant la route. Ce n'est pas du tout un fait que les lapins que vous confiez à l'animalerie trouveront une vie meilleure. Car ils seront vendus comme marchandise au premier acheteur qui se présentera et personne ne vérifiera dans quel but les animaux sont achetés. De nombreux lapins seront donnés à manger aux serpents ou achetés comme friandise pour un enfant qui s'ennuiera bientôt.
—Castré et castré beaucoup plus complaisamment et ludique tisser des liens avec de nouveaux amis. Les lapins sont des animaux sociaux et elle aime se faire des amis avec d'autres lapins. Mais jusqu'à ce qu'ils soient stérilisés, ils ne peuvent malheureusement pas traiter un autre lapin comme un ami, en raison du harcèlement sexuel (du sexe opposé) ou de l'agression envers les lapins du même sexe, qui est causée par les hormones.
—La stérilisation et la stérilisation des lapins sont sans danger(à condition d'avoir contacté un vétérinaire expérimenté). La Domestic Rabbit Association www.rabbit.org a vu ce genre d'opération plus d'un millier de fois. Les décès représentent environ 0,1 % de ces opérations, la principale cause étant l'anesthésie. Un vétérinaire spécialiste des lapins effectuera cette opération avec peu ou pas de risque pour la santé de votre animal. Ne laissez pas un vétérinaire faible ou inexpérimenté effectuer ce type de chirurgie sur votre animal.
L'opération est-elle vraiment sans danger pour les lapins ?
Cette opération est aussi sécuritaire pour les lapins que pour les autres animaux. Malheureusement, la plupart des vétérinaires ne savent pas comment effectuer des interventions chirurgicales en toute sécurité sur des lapins. Ne laissez pas un vétérinaire inexpérimenté ou un vétérinaire qui n'a pas travaillé avec des lapins opérer votre animal. Il est également nécessaire de bien prendre soin du lapin avant et après l'opération.
A quel âge peut-on opérer un lapin ?
Les femelles peuvent être opérées après la puberté à 4 mois, mais la plupart des vétérinaires préfèrent attendre jusqu'à l'âge de six mois, car les jeunes lapins peuvent subir moins de chirurgie sans lame. Les mâles sont castrés à partir de 3,5 mois dès que leurs ovaires descendent, mais la plupart des vétérinaires conseillent d'attendre jusqu'à cinq mois.
A quel âge est-il trop tard pour cette opération ?
Les vétérinaires pensent différemment, mais ils s'accordent sur une chose : après l'âge de six ans, l'anesthésie et l'opération elle-même deviennent plus dangereuses pour la santé. Cette idée est toujours d'actualité, la seule chose est que si votre lapin a plus de deux ans, cela vaut la peine de faire un examen préliminaire, en particulier du système cardiovasculaire. L'examen peut vous coûter beaucoup plus cher que l'opération elle-même, mais il peut révéler les raisons pour lesquelles l'opération pourrait être plus dangereuse pour votre animal. L'examen préliminaire est particulièrement important pour le choix de l'anesthésie.
Comment déterminer si une femelle a été stérilisée par des propriétaires précédents ou un éleveur ?
Il y a une forte probabilité que la femelle n'ait pas été stérilisée. Vous pouvez raser le bas-ventre et voir s'il y a une cicatrice. Cependant, les techniques modernes permettent aux vétérinaires d'effectuer de telles opérations sans laisser de cicatrices. Il est possible que le vétérinaire mette une marque sur l'abdomen, indiquant que l'opération a été effectuée, mais cela est peu probable. Par conséquent, le seul moyen est de vérifier cette opération supplémentaire.
Quelles questions dois-je poser à un vétérinaire dans une clinique vétérinaire?
Combien de propriétaires de lapins vous contactent par an ?
Combien de castrations/neutres ce vétérinaire a-t-il fait au cours de la dernière année ?
Quel est le pourcentage de transactions réussies ? 90% d'opérations réussies est un pourcentage trop faible pour ce genre d'opérations. Tout médecin, vétérinaire ou humain, perd un patient par accident, généralement en raison d'une maladie ou d'une affection non diagnostiquée. Les vétérinaires de tout le pays (États-Unis) qui ont castré/stérilisé des lapins pour la House Rabbit Society ont perdu la vie de moins de 0,5 % du nombre total d'animaux opérés. - S'il y a eu des morts, quelle en était la cause ?
Le médecin enlève-t-il à la fois les ovaires et l'utérus ? (le vétérinaire doit retirer les deux organes)
Le médecin pratique-t-il une castration "ouverte" ou "fermée" ? (Fermé est préférable - laissez votre médecin vous expliquer la différence.)
Le passage chirurgical (entrée) des testicules se fera-t-il par le scrotum ou par l'abdomen ? (Le passage par la cavité abdominale augmente inutilement le traumatisme du lapin mâle).
Le vétérinaire exige-t-il que l'animal s'abstienne de manger et de boire avant la chirurgie ? (Il est préférable de ne pas le faire - un lapin ne peut pas vomir, il ne faut donc pas craindre cela pendant l'opération et il ne faut pas le laisser vider complètement le tube digestif du lapin).
Quels anesthésiques seront utilisés ? (De nombreux vétérinaires ont réussi à effectuer des opérations en utilisant un anesthésique autre que l'isoflurane. Mais après eux, le lapin sera comme ivre ("gueule de bois") et ne pourra probablement pas manger longtemps après l'opération. , qui à leur tour causeront de sérieux problèmes, si vous ne vous en occupez pas à temps.
Discutez des soins opératoires et postopératoires avec votre vétérinaire. Découvrez comment les problèmes seront identifiés, à quelle fréquence le vétérinaire ou son assistant pourra-t-il rendre visite à votre bébé ? Vont-ils faire quelque chose pour identifier d'éventuels problèmes postopératoires ? Quel genre de soins seront prodigués à votre animal immédiatement après l'opération : oxygène, chaleur, paix (les chiens qui aboient et les chats qui miaulent dans les cages voisines ne sont pas la meilleure option). Que feront les médecins pour ramener le lapin à la vie ?! Poser des questions! Cela attirera l'attention du vétérinaire. Faites-lui savoir que vous êtes préoccupé par la santé de votre animal et que vous surveillerez strictement ses actions.
Quels soins pré et postopératoires donner à un lapin ?
Donnez à votre lapin acidophilus quelques jours avant la chirurgie, juste pour vous assurer que le système digestif du lapin va bien.
Ne changez en rien son alimentation. Après l'opération, donnez également acidophilus jusqu'à ce que l'appétit revienne à la normale.
Vérifiez les coutures quotidiennement. Après la castration, le scrotum peut être rempli de liquide. Une compresse chaude sera utile, mais ne vous inquiétez pas trop. S'il y a un soupçon d'infection, emmenez immédiatement le lapin chez le vétérinaire.
Séparez la femelle opérée des mâles(castrée ou non n'a pas d'importance) car elle pourrait être gravement blessée si le mâle essaie de la couvrir. Après l'opération, assurez-vous qu'il est calme et calme afin que le lapin n'ait pas peur et ne panique pas, ne provoquez pas de pirouettes acrobatiques, mais laissez le lapin se déplacer librement dans l'endroit habitable - le lapin lui-même sait ce qui va faire mal lui et ce qui ne le sera pas.
De nombreux vétérinaires laissent les lapins à la clinique pendant la nuit. Si le vétérinaire vous autorise à ramener le lapin à la maison, vous devez savoir ce qui suit :
-Beaucoup de mâles rentrant chez eux après la chirurgie espèrent trouver un délicieux dîner, assurez-vous qu'ils ont leurs granulés préférés, de l'eau et un tas de foin frais (une bonne luzerne fraîche aidera le lapin à retrouver son appétit).
-Beaucoup de femelles préfèrent être laissées seules, elles ne montrent aucun appétit et s'assoient tranquillement dans le coin le plus éloigné de la cage ou dans ce coin de la maison où elles peuvent être sûres qu'elles ne seront pas dérangées.
Le lendemain matin ou le soir du jour suivant l'opération, il faut que le lapin mange quelque chose. Peu importe quoi et combien, car avec l'apport de nourriture, le tube digestif continuera à fonctionner. Si le lapin ne mange toujours pas, alors, en dernier recours, préparez un mélange de granulés pour lapin (1 volume de granulés et 2 volumes d'eau, broyez-le soigneusement dans un mixeur, ajoutez de l'acidophilus et donnez-le par petites portions à l'aide d'une seringue (sans aiguille). ) du côté de la bouche un lapin). La femme peut accidentellement enlever les points de suture. Cousez à nouveau puis faites un bandage en enroulant une serviette de table autour de son ventre et en le fixant avec un bandage élastique. Assurez-vous que le lapin peut respirer librement, mais que le bandage est bien fixé.

UDC 619:636.92:615.211

Médicaments injectables et leurs associations utilisés pour l'anesthésie des lapins

Drogues injectables utilisé pour introduire des lapins en anesthésie lors de diverses procédures diagnostiques et thérapeutiques. Leur utilisation est possible à la fois indépendamment et avant les médicaments par inhalation. L'anesthésie par injection, contrairement à l'inhalation, ne nécessite pas d'équipement spécial, c'est pourquoi de nombreux vétérinaires sont obligés d'utiliser cette méthode. Actuellement, diverses combinaisons de médicaments pour injection et anesthésie par inhalation sont plus souvent utilisées.

L'expérience accumulée montre que de nombreux médicaments utilisés pour la sédation, l'anesthésie et l'analgésie peuvent également être utilisés pour les lapins, mais des doses efficaces et sûres de médicaments, leur pharmacodynamie et l'utilisation de combinaisons de médicaments présentent des caractéristiques importantes. Certaines préparations et leurs combinaisons, dont l'effet sur l'organisme des lapins a été étudié et qui peuvent intéresser les vétérinaires de notre pays, sont décrites ci-dessous.

Acépromazine ( Maléate d'acépromazine) - un dérivé de la phénothiazine, a un effet dépresseur sur le système nerveux central. C'est un inhibiteur de la dopamine, un alpha-bloquant à faible activité antimuscarinique. La principale utilisation de l'acépromazine en médecine vétérinaire est son effet tranquillisant, d'autres incluent l'effet antiarythmique et l'effet antispasmodique. Il est couramment utilisé pour la prémédication chez les animaux de nombreuses espèces. L'acépromazine a un effet hypotenseur et n'a pas d'activité analgésique. Dose pour les lapins comme tranquillisant 1 mg/kg IM, l'effet doit se produire dans les 10 minutes et durer 1 à 2 heures . Ghaffari MS et al., (2009) ont découvert que l'acépromazine à dose normale réduisait la production de larmes chez les lapins. . Chez le lapin, l'acépromazine peut être utilisée comme prémédication avant l'anesthésie gazeuse. Il peut être utilisé en association avec le butorphanol pour une meilleure sédation.

Xylazine(Xylazine) - est un antagoniste alpha 2-adrénergique, a un effet sédatif modéré et analgésique mineur chez le lapin. Provoque la relaxation des muscles squelettiques par une action centrale. Auparavant, il était utilisé seul ou en association avec la kétamine. Cette association provoque une dépression respiratoire et circulatoire et, à fortes doses, des arythmies cardiaques et une mortalité élevée chez le lapin. L'atipamézole, un alpha-bloquant, peut être utilisé comme antagoniste pour stopper l'action de la xylazine.

Médétomidine(La médétomidine (Domitor, Pfizer) est un agoniste alpha 2 plus spécifique que la xylazine avec moins d'effets secondaires. Elle est nettement plus chère et nécessite des doses plus élevées chez les lapins que chez les autres espèces animales. La médétomidine peut être utilisée comme prémédication ou en association avec la kétamine pour anesthésie chirurgicale... La médétomidine provoque une constriction des vaisseaux périphériques, modifiant l'apport sanguin aux muqueuses, de sorte qu'il peut être déterminé à tort que l'animal a une cyanose.Lors de l'utilisation de la médétomidine, une hypoxie se développe souvent, de sorte que toute la période d'anesthésie nécessite l'utilisation d'oxygène.

La vasoconstriction induite par la médétomidine peut interférer avec l'oxymétrie de pouls et la ponction veineuse pour les prélèvements sanguins et la fluidothérapie. Ce médicament provoque un bon relâchement du larynx, facilitant l'intubation endotrachéale. Il ne provoque pas de dépression respiratoire et la récupération se produit généralement dans les trois heures. La récupération peut être accélérée par l'utilisation d'atipamisole.

Butorphanol(Butorphanol) est un antagoniste synthétique des récepteurs opioïdes. L'effet analgésique est 3 à 5 fois supérieur à celui de la morphine chez l'homme et plus de 30 fois chez le rat. Chez le lapin, le butorphanol provoque une analgésie et une légère sédation, ne provoque pas de dépression respiratoire à moins que des doses élevées ne soient utilisées. . Appliqué pour soulager la douleur postopératoire à une dose de 0,4 mg/kg par voie orale toutes les 4 à 6 heures. Plusieurs études ont montré que l'utilisation de doses élevées de butorphanol provoque moins d'effet analgésique que des doses plus faibles. La demi-vie d'élimination du butorphanol chez le lapin à la dose de 0,5 mg/kg est de 1,64 heures après administration intraveineuse et de 3,16 heures après administration sous-cutanée. Le butorphanol peut être utilisé pour inverser les effets dépresseurs respiratoires des μ-agonistes tels que le fentanyl, la morphine et la péfidine. Le butorphanol (0,05 mg/kg SC ou IM) est utilisé en association avec la médétomidine et la kétamine pour l'anesthésie chirurgicale. Il peut également être utilisé en association avec l'acépromazine pour la sédation . Cette combinaison provoque une vasodilatation, ce qui facilite les prélèvements sanguins et les injections intraveineuses.

Propofol(Propofol) est un médicament hypnotique à courte durée d'action sans ressemblance avec les médicaments pour l'anesthésie générale, le mécanisme d'action n'est pas clair . En tant que médicament utilisé pour l'induction de l'anesthésie, il présente de nombreux avantages, notamment un effet hypnotique profond et une étendue thérapeutique, un début d'action rapide et une récupération rapide. Les doses répétées ne s'accumulent pas et le propofol peut être utilisé pour maintenir l'anesthésie par perfusion continue. Baumgartner CM et al. (2009) ont utilisé à cette fin du propofol à une dose de 4,0-8,0 mg/kg par voie intraveineuse, pour maintenir l'anesthésie 1,2-1,3 mg/kg/min . Une dose de 5 à 14 mg/kg laisse suffisamment de temps à un anesthésiste expérimenté pour effectuer l'intubation. Après administration, une apnée de courte durée est possible, et lorsque des doses élevées sont utilisées, un arrêt respiratoire est possible.

Les études de Dikmen B. et al. (2010) ont montré que l'utilisation du propofol est préférable à celle de la kétamine chez les animaux insuffisants rénaux. . ZhuT et al. (2008) ont découvert que le propofol améliore le flux sanguin hépatique . Selon Fudickar A. et al. (2009) l'administration de propofol entraîne des conséquences négatives telles qu'une bradycardie aiguë, une asystole, une hyperlipémie et une acidose métabolique, une rhabdomyolyse et une myoglobinurie, qui sont décrites comme le syndrome de perfusion de propofol (PRIS). Le propofol n'est pas recommandé pour l'anesthésie à long terme chez le lapin. Dans les expériences de Chen WH et al. (2006) le propofol avait un effet direct sur le cœur des lapins, provoquant une forte diminution de la pression artérielle et une bradycardie.

Kétamine(Kétamine) est un médicament dissociatif utilisé comme seul médicament pour l'induction de l'anesthésie ou en association avec d'autres médicaments pour l'induction et le maintien de l'anesthésie. La kétamine a un effet sympathomimétique qui augmente la fréquence cardiaque, le débit cardiaque et la pression artérielle. L'administration intramusculaire de kétamine à une dose de 40 mg/kg après 6,0 ± 0,5 minutes a provoqué une anesthésie chez le lapin pendant une durée de 36,0 ± 0,9 minutes. L'administration intramusculaire préliminaire de vitamine C à des doses de 30, 60 et 240 mg/kg a réduit le temps d'induction sous anesthésie et d'anesthésie prolongée à 5,0 ± 0,06 et 37,0 ± 0,7 ; 4,0 +/- 0,5 et 39,0 +/- 0,6 ; 2,0 +/- 2,3 et 44,0 +/- 0,8 minutes respectivement .

Des études ont montré que l'utilisation de kétamine à une dose de 10 mg/kg par voie intraveineuse chez des lapins atteints de lésions médullaires les protège de l'ischémie et prévient une diminution des taux d'antioxydants. .

La kétamine n'élimine pas les réflexes oculaires, laryngés et de déglutition. Une mauvaise relaxation musculaire rend la kétamine impropre à une utilisation en tant qu'agent unique pour l'anesthésie avant la chirurgie, elle est utilisée en association avec la xylazine ou d'autres médicaments. Les associations kétamine/diazépam et kétamine/acépromazine augmentent la pression intraoculaire chez le lapin.

Tilétamine/zolazépam(tilétamine / zolazépame) - tilétamine - un anesthésique injectable, chimiquement similaire à la kétamine, zolazépam - un tranquillisant diazépine faible. L'action pharmacologique du médicament combiné est similaire à celle de la kétamine et du diazépam. La pertinence de l'association tilétamine/zolazépam pour l'anesthésie du lapin a été étudiée par Brammer DW et al. (1991). L'administration intramusculaire de 32 et 64 mg/kg du médicament n'a pas provoqué d'anesthésie et a entraîné un effet néphrotoxique avec le développement d'une insuffisance rénale dans les 5 jours. Les chercheurs ont conclu que ce médicament est contre-indiqué chez le lapin. . La néphrotoxicité de l'association tilétamine/zolazépam chez le lapin a également été établie dans l'étude de Doerning BJ. et coll. (1992). L'échec de l'association tilétamine/zolazépam à induire une anesthésie chez le lapin est tiré de Dupras J. et al. (2001) . Dans le même temps, il faut tenir compte de l'impossibilité de l'usage légal de nombreuses drogues utilisées à travers le monde dans notre pays. Si la clinique vétérinaire n'est pas équipée pour utiliser l'anesthésie par inhalation et n'est pas autorisée à utiliser la kétamine, le tilétamine/zolazépam est l'un des rares médicaments de choix et doit être associé à d'autres médicaments.

Kétamine et xylazine.

Pour les procédures mini-invasives ne durant pas plus de 30 à 40 minutes, la kétamine à une dose de 35 mg/kg mélangée à de la xylazine 5 mg/kg est administrée par voie intramusculaire ou sous-cutanée . Une fois anesthésié, le lapin peut être intubé et, si nécessaire, connecté à un ventilateur. Le maintien de l'anesthésie jusqu'à 3 heures est assuré par l'administration intraveineuse d'un mélange de kétamine/xylazine (10 + 2 mg/kg).

Kétamine, xylazine et acépromazine.

Hobbs BA. et coll. (1991) ont trouvé que la combinaison de kétamine/xylazine avec l'acépromazine est préférable si une longue opération est nécessaire, dans leur étude la période d'anesthésie était de 60 à 120 minutes. Mais cette combinaison, administrée par voie intramusculaire, a provoqué une inflammation périneurale et une fibrose chez 4 lapins sur 6 dans une étude de 1999 par Vachon P. .

médétomidine et kétamine.

Un mélange de médétomidine/kétamine à la dose de 0,35 mg/kg + 5 mg/kg par voie intraveineuse permet d'obtenir une anesthésie chirurgicale d'au moins 35 minutes. L'administration intraveineuse d'atipamézole arrête l'action de ces médicaments. Des études chez le lapin (Kim MS et al. 2004) ont montré qu'une dose égale ou double d'atipamisole est optimale pour l'inversion de l'anesthésie. .

Kétamine, médétomidine et isoflurane.

La kétamine à une dose de 15 mg/kg et la médétomidine 0,25-0,5 mg/kg par voie sous-cutanée ou intramusculaire en association avec l'isoflurane 1,5-2,0 % fournissent un degré d'anesthésie suffisant pour l'orchidectomie et l'ovariectomie. L'injection sous-cutanée est plus facile à tolérer, mais après l'injection intramusculaire, l'induction sous anesthésie est plus rapide. L'atipamézole est un antagoniste efficace, à une dose de 0,5-1,0 mg / kg, il agit plus rapidement lorsqu'il est administré par voie intramusculaire que par voie sous-cutanée, accélère la récupération du lapin.

Kétamine et xylazine avec butorphanol.

Dans une étude de Marini RP et al. (1992) la kétamine/xylazine à une dose de 35 mg/kg + 5 mg/kg a été utilisée avec du butorphanol 0,1 mg/kg. L'inclusion de butorphanol dans cette combinaison a prolongé l'anesthésie de 1,4 à 1,6 fois de 77 à 99 minutes. .

Médétomidine, kétamine et butorphanol avec isoflurane.

Une combinaison de médétomidine, de kétamine et de butorphanol est utilisée pour les procédures courtes telles que la taille des incisives ou les radiographies. Il peut également être utilisé pour induire une anesthésie avant l'utilisation de l'anesthésie par inhalation pour des procédures plus longues telles que les molaires, l'ablation des incisives, dans ces cas, l'intubation est nécessaire car l'utilisation d'un masque facial n'est pas possible. Nous recommandons également une anesthésie par inhalation lors du lavage du canal lacrymal.

La médétomidine à la dose de 0,2 mg/kg en association avec 10 mg/kg de kétamine et 0,5 mg/kg de butorphanol est administrée par voie sous-cutanée. Cela équivaut à 0,2 ml/kg de Domitor (Pfizer), 0,1 ml/kg de kétamine et 0,05 ml/kg de Torbugesic (Fort Dodge). L'injection est généralement douloureuse, l'effet des médicaments commence après 5 à 10 minutes et dure environ 20 minutes. La récupération complète se produit en 2 à 4 heures.

A la fin de l'intervention, l'effet de la médétomidine peut être supprimé par l'atipamézole 1 mg/kg (0,1 ml/kg) (Antisedan (Pfizer). La durée d'action de l'atipamézole est de 15 à 40 minutes. L'effet analgésique de la médétomidine est également éliminé par l'atipamézole.l'anesthésie se produit après 1-2 heures.

Tilétamine/zolazépam et xylazine.

Dupras J. et al. (2001) ont étudié la possibilité d'utiliser l'association tilétamine/zolazépam à la dose de 20 mg/kg en association avec la xylazine 3 mg/kg. lorsqu'il est administré par voie intramusculaire. L'introduction de l'anesthésie a duré environ 3 minutes, la durée de l'anesthésie a été en moyenne de 109,4 minutes. En relation avec la capacité de la xylazine à provoquer une hypoxie importante, les chercheurs soulignent l'apport obligatoire d'oxygène au lapin.

Razina A.V. et al. (2010) recommandent l'administration intramusculaire de rometar à une dose de 4,0 à 6,0 mg/kg, suivie (après 20 minutes) par l'administration intramusculaire de tilétamine/zolazépam à une dose de 5 à 10 mg/kg. Après 5 min. Après injection intramusculaire de zoletil, une relaxation musculaire complète s'est produite, le réflexe cornéen et la sensibilité à la douleur étaient absents, la pupille s'est dilatée. L'anesthésie a duré environ 30 minutes, après 1,5 heure, le lapin s'est déplacé indépendamment.

Table - Médicaments et leurs associations recommandés pour la sédation et l'anesthésie des lapins

Les préparatifs	Dose (mg/kg)	Action	Mode d'application	Durée d'action
acépromazine		sédation, ne provoque pas d'analgésie
acépromazine + butorphanol		sédation et analgésie
butorphanol + médétomidine + kétamine		anesthésie		20-30 minutes, récupération 1-4 heures
kétamine + xylazine		anesthésie		30-40 minutes, récupération 1-2 heures
kétamine + xylazine + butorphanol		anesthésie		40-60 minutes récupération 1-2 heures
kétamine + xylazine + acépromazine		anesthésie		25-40 minutes, récupération 1-2 heures
kétamine + acépromazine		anesthésie
kétamine + médétomidine		anesthésie		au moins 35 minutes
propofol		hypnotique		pour maintenir l'anesthésie 1,2-1,3 mg / kg / min
acépromazine + butorphanol + propofol		sédation et analgésie		pour maintenir l'anesthésie propofol 1,2-1,3 mg / kg / min
tilétamine/zolazépam + xylazine		anesthésie
xylazine + tilétamine/zolazépam		anesthésie		30 min, récupération 1h30

Ainsi, les médicaments actuellement existants et la possibilité de leur utilisation dans diverses combinaisons permettent, dans la plupart des cas, de choisir la méthode d'anesthésie en fonction de l'état du lapin, de la nature et de la durée de l'opération envisagée. Dans ce cas, l'équipement de la clinique vétérinaire et l'expérience du médecin jouent un rôle important.

Candidat en sciences vétérinaires, professeur agrégé au Département des maladies des oiseaux, des poissons, des abeilles et des animaux à fourrure, Académie de médecine vétérinaire de Saint-Pétersbourg, Centre de médecine vétérinaire Vetus.

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